M.V. Myriam Favi Cortes

Sección Rabia

Instituto de Salud Pública Chile

SITUACION DE LA RABIA EN CHILE

RABIA

Se describe como una enfermedad infecciosa viral que

causa una encefalitis aguda que puede afectar a cualquier

vertebrado homeotermo.

Prácticamente todos los mamíferos son susceptibles al

virus de la rabia, siendo el perro el principal reservorio sobre

todo en los países en desarrollo.

Cuando la rabia en perros se ha controlado, los quirópteros

desempeñan un papel muy importante.

La rabia es una zoonosis milenaria de alta significancia

mundial en salud pública, agricultura y economía,.

o Familia Rhabdoviridae

o Género: Lyssavirus

genotipos:

1.-Virus de la rabia (RABV) (Rabia clásica distribuido en

Continente Americano)

2. Murciélago de Lagos (LBV) 1956

3. Mokola (MOKV) 1968

4. Duvenhage de murciélago (DUVV) 1970

5. Lyssavirus tipo 1 de murciélagos europeos (EBLV-1) 1992

6. Lyssavirus tipo 2 de murciélagos europeos (EBLV-2) 1995

7. Lyssavirus de murciélagos australianos (ABLV) 1996

8.-Aravan 1991

9. Khujand Central 2001 Asia Central

10. Irkut 2002

11. Virus de murciélago occidental caucásico Rusia

(WCBV) 2002 ICTV = International Committee on Taxonomy of Viruses (www.ictvonline.org/)

ETIOLOGÍA Y FISIOPATOGENIA

o Orden Mononegavirales

.

•Familia: Rhabdoviridae

Virus RNA envuelto tiene forma cilíndrica alargada,

un extremo plano y otro cónico, que suele medir

75x180nm

Sobrevive a 4ºC durante semanas, y a – 70 ºC

durante años

Muere rápidamente por la radiación ultra violeta

o a la luz solar, por solventes lipídicos, tripsina,

detergentes y por un Ph extremo

Virus de la rabia

Neurotrópico

Reproducción citoplasmática

El virus es liberado al salir fuera

de la membrana de las células

Características del Virus

VIRUS RABICO

Posee 2 unidades estructurales:

1.-Envoltura bilipídica derivada de la célula huésped

cubierta de espículas o proyecciones de trímeros de proteína

G que reconocen y se unen a los receptores acetilcolina de

la célula

•La proteína G es responsable del

reconocimiento de receptores y fusión.

•La proteína G es el único antígeno que induce

anticuerpos virus-neutralizantes

2.- Complejo ribonuclecapside (RNP)

Estructura helicoidal compuesta por el ARN viral,

asociado a las proteínas N nucleocápside, L ( RNA polimerasa)

y P (fosfoproteína cofactor de la polimerasa)

La proteína M es responsable de la morfogénesis y también interactúa

con proteínas celulares

La proteína N proporciona protección para el ARN y puede regular

el balance entre la transcripción y replicación

VIRUS RABICO

Patogenia

Vías de infección

digestiva

respiratoria epidérmica

Trasplante de órganos

transcutanea

Patogenia

Replicación viral

músculo

ganglio neuronas

Nervios perifericos

Ganglio espinal

encéfalo Troncos nerviosos

Cornea

Gln.salivales

Riñón

Pulmón

etc.

Periodo de incubación

entre 2 y 8 semanas, aunque se sabe de periodos más cortos y

más prolongados.

Cuadro Clínico

Periodo prodrómico ( 2-10 días)

• Anorexia

• Fotofobia

• Irritación alrededor de la herida

• Vómito Fiebre

Fase neurológica aguda Rabia furiosa

( 1-7 días)

Nervioso, agresivo

Hidrofobia

Salivación excesiva

Pica

Rabia paralítica

( 2- 4 días)

Parálisis progresiva

Insuficiencia respiratoria

ETAPA FINAL

Cualquier neurona del cuerpo sirve para alojar al virus,

el daño a las neuronas motoras causa lesiones progresivas

en los nervios motores bajos ,que producen la parálisis

fláccida típica de la enfermedad y parálisis ascendente.

Existen estudios neuro farmacológicos que han sugerido

que la rabia, es el resultado de alteraciones funcionales de

las neuronas , más que de un daño estructural

Existe un período de tiempo para destruir el virus inoculado

antes de que llegue a las células huéspedes , simplemente

lavando la herida con agua y jabón.

Cuadro Clínico

La situación de la rabia en el mundo evoluciona

constantemente y es muy diferente de un continente a otro.

La rabia ha sido erradicada, en gran parte de los países

desarrollados pero sigue siendo prevalente y un problema de

Salud pública en el mundo en desarrollo causando unas 55

mil muertes cada año.

Continente asiático 31.000 muertes al año

India 20.000 muertes al año

-EPIDEMIOLOGIA

Epidemiologia de la Rabia en

Latino América

Es un problema de Salud Publica en mas de 150 países,

incluida toda América Latina y el Caribe.

En el año 1983 las autoridades de salud, de los países

de América Latina asumieron un compromiso político,

con el apoyo de la OPS para eliminar la rabia humana

transmitida por perros en la región de las Américas para

el año 2005

Campañas masivas de vacunación antirrábica canina

Tratamiento profiláctico oportuno y de calidad de las

personas expuestas

Vigilancia epidemiológica

Red de Laboratorios de Diagnóstico de Rabia

Acciones educativas

Control de población canina

Estrategia de acción

Desde 1983 la ocurrencia de casos de rabia

humana transmitida por el perro ha disminuido

en forma sostenida .

Entre 1982 y 2003, la rabia en perros, disminuyó

de 15.686 a 1.142 casos, es decir 93%

El número de casos humanos disminuyó de 355

a 38, lo que representa una reducción de 91%,

en el mismo período.

SITUACION EPIDEMIOLOGICA

Cambios en la situación epidemiológica de la rabia en América Latina

La situación cambia y la

mayoría de los casos humanos

tiene a los animales silvestres

como especie transmisora,

principalmente a los

murciélagos. 2005

Por muchos años, la mayoría de los casos de rabia humana contaban con el perro como principal especie transmisora. 1995

Existen áreas endémicas favorecidas por fallas en

la vacunación de perros y condiciones sociales y

ambientales propicias para el contacto entre perros

y el hombre, particularmente los niños.

Un solo caso de rabia canina puede ser

determinante en la reemergencia de la enfermedad

y de casos humanos de rabia.

.

SITUACION EPIDEMIOLOGICA

Factores de riesgo

La tenencia de gatos no inmunizados es un serio

factor de riesgo dado que suelen ser predadores

de pequeños mamíferos de vida silvestre y

hospederos incidentales del virus de la rabia.

La adopción de animales de especies de vida

silvestre como mascotas, es otro factor de riesgo

puesto que no existen esquemas de vacunación

establecidos para estas especies y pueden

también actuar como intermediarios en la

trasmisión de la rabia al hombre.

SITUACION EPIDEMIOLOGICA Factores de riesgo

Logros alcanzados en AL 1970 AL 2011

Casos de rabia en perros Casos humanos trasmitidos por perros Casos humanos trasmitidos por murciélagos

RABIA HUMANA SEGUN FUENTE DE INFECCION. 2000 - 2011

Gatos Perros murciélagos

Casos de rabia humana

2000-2012

Año Casos humanos

trasmitidos por

perros

Casos humanos

trasmitidos por

murciélagos

Casos

de rabia en

perros

2000 38 10(6nh) 1.920

2001 43 6(2nh) 1.725

2002 24 13(3nh) 1.387

2003 29 8(3nh) 1.142

2004 22 51(2nh) 1.010

2005 15 60(5nh) 1.454

2006 30 7 (2nh) 1.171

2007 16 28(4nh) 730

2008 16 7(1nh) 809

2009 12 24(4nh) 620

2010 5 20(2nh) 268

2011 24 33 (E ,P) 555

2012 9 11 324

Haiti 11

EEUU

EEUU

Bol,haiti

B

Diagnóstico de rabia

Es una herramienta fundamental para la toma de decisiones en el programa de prevención y control.

Permite definir la conducta médica a seguir con las personas expuestas

Aporta los antecedentes de la situación epidemiológica de la enfermedad.

Muestras

-Animales mordedores que mueran en el período de observación.

-Animales sospechosos sacrificados por decisión de la autoridad sanitaria.

-Porcentaje de captura de animales domésticos sin dueño o vagabundos

-Sistema de vigilancia de quirópteros y otras especies silvestres suceptibles

ALGORITMO DIAGNOSTICO DE INFECCION POR VIRUS

RABICO

MUESTRA (CEREBRO)

IFD

NEGATIVO INDETERMINADO POSITIVO

INFORME INOCULACION

RATONES INFORME

INOCULACION

RATONES

NEGATIVO

INFORME

IDENTIFICACION

ANTIGENICA Y/O GENETICA

INFORME

POSITIVO

Sueros : Titulación de ac antirrábicos Inhibición de focos fluorescentes

RIFFT LCR

Inhibición de focos fluorescentes RIFFT

SUERO EN ESTUDIO

Diluciones

1:5

1:25

1:125

1:625

DOSIS DE VIRUS

Suero de Referencia

Incubación a 37ºC por 90 min.

200 ml de suspensión de

células MNA

Incubación a 37ºC por 20 horas

TINCIÓN Conjugado antirrábico

Microscopio Recuento de focos fluorescente

Resultados en UI Protectivo >0,5 UI

Rabia en Chile

1950 1960

Rabia urbana

Endémica

Instauración de un programa

de control y prevención de la rabia

en el país

1962

Disminución

de casos

1972

Caso humano V1

1982 1984

Silencio

epidemiológico

1- Reducir la población canina

2- Inmunizar masivamente a los perros

3- Aumentar la cobertura del diagnóstico de rabia

En enero de 1985 se detectó el primer murciélago positivo a

rabia en el país.

1,8 13 704 Total

0,10 0,16 1 619 Captura

masiva

1,7 14,1 12 85 Sospechosos

Según

total

Según

captura

Número Total Murciélagos

Porcentaje Positivos Analizados *

*Abril – Junio

1985

Favi M, Catalán R Av. Cs. Vet. 1:73-76 1986

Rabia en Chile

1990

Ultimo caso perro V1

1996

Caso humano V4

2007

Caso perro y gato

V4

1985

Casos

Murciélagos

insectívoros

Se implementa

caracterización viral

1997 2013

Caso rabia

humano

Identificación de la variante viral

Tipificación Antigénica: Anticuerpos

monoclonales

Tipificación Genética: Secuenciamiento

genético

Tipificación de virus rábico

•Tipificación Antigénica: Panel de 8 Anticuerpos monoclonales

contra epitopes de la nucleoproteína CDC, Atlanta

Las variantes antigénicas definidas dentro del genotipo 1 han permitido determinar que existe una asociación específica de la variante con el reservorio natural del virus.

Tipificación de virus rábico

•Tipificación Genética: Secuenciamiento de gen de la

nucleoproteína para determinar la variabilidad genética de los virus según

reservorio.

El secuenciamiento genético permite la identificación de variantes que

no pueden ser definidas antigénicamente.

250 cepas de los años 1977 a 1998

Reactivadas

119 cepas

Tipificadas por IFI con un panel de 8 anticuerpos monoclonales

ESTUDIO RETROSPECTIVO DE CEPAS DE VIRUS RÁBICO

Rol de los murciélagos insectívoros en la transmisión de la rabia en Chile 1999 Favi M., Yung V., Pavletic C., Ramírez E., De Mattos C., De Mattos C.A.

Archivos de Medicina Veterinaria 31, 157-165.

C1

C4

C9

C10

C12

C15

C18

C19

AgV

CVS/ERA

+

+

+

+

+

+

+

+

Lab.

Perro/Man

+

+

+

+

+

+

-

+

V 1

Perro

+

+

-

+

+

+

-

+

V 2

Vampiro

-

+

+

+

+

-

-

+

V 3

T.brasiliensis

-

+

+

+

+

-

-

-

V 4

Vampiro

-

+

V

+

+

V

-

V

V 5

L. cinereus

v

+

+

+

+

-

-

-

V 6

Zorro

+

+

+

-

+

+

-

+

V 7

Zorrillo

-

+

+

+

+

+

+

+

V 8

T.bras. Mex.

+

+

+

+

+

-

-

-

V9

Panel de Identificación de Anticuerpos Monoclonales

CARACTERIZACION ANTIGENICA

1977-1990

Tb: Tadarida brasiliensis, Mch: Myotis chiloensis, G: Gato, P: Perro, B: Bovino

Variante

Antigénica 1977 1981 1983 1985 1986 1987 1988 1989 1990 Total

1 1 P 1 P 1 B 1 P 4

4 1 B 13Tb

1 G

2 P

1 G

5Tb

13Tb

1 C

1 P

1Tb 2Tb 8Tb

1 P 50

NT

3 1Mch 1

CARACTERIZACION ANTIGENICA

1991-2001

Variante

Antigénica 1991 1992 1993 1996 1997 1998 1999 2000 2001 Total

4 1Tb 1Tb 6Tb 44Tb

1 H

9Tb

1 P

1 G

9Tb 31Tb 54Tb 24Tb 182

6 4Lc 4Lc 1Lc

3Lb 12

NT 3Hm 1Hm

1G 5Hm 10

3 1Mch 1

NT: not typified, Tb: Tadarida brasiliensis, Lc: Lasiurus cinereus, Mch: Myotis chiloensis, G: Gato, P: Perro

CARACTERIZACION ANTIGENICA

2002-2012

Variante

Antigénica 2002 2003 2004 2005 2006 2007 2008 2009 2010 2011 2012 Total

4 96Tb 68Tb 74Tb

1Mch

90Tb

1Mch 100Tb

73 Tb

1 P

1 G

70Tb 42Tb 51Tb 80Tb 74Tb 822

6 2Lc 2Lc 2Lb

1Lc

3Lc

2Lb 3Lc 1 Lc 2Lc

3Lc

2Lb 1Lc

9Lc

1Lb 6Lc 40

NT 5Hm 1Tb 1Hm 1Hm 1Hm 3 Hm 2Hm 3Hm 2Hm 19

3 1Mch 1Mch 1Mch 1Mch 1Mch 1Mch 1Mch 7

8 1Mch 1Mch 2

9 2 Tb 2Tb 4

NT: not typified, Tb: Tadarida brasiliensis, Lc: Lasiurus cinereus, Mch: Myotis chiloensis, G: Gato, P: Perro

Caracterización Genética

• Extracción de RNA de tejido infectado

• Transcripción reversa del RNA

• Amplificación del DNAc por Reacción de Polimerasa en Cadena

• Purificación del DNA

• Secuenciación de DNA por PCR (320 pb, hoy 1500pb)

• Análisis de las secuencias por programas computacionales

12-41 Tb 12-78 Tb 12-1256 Tb 12-1430 Tb 12-1142 Tb 12-260 Tb 12-1107 Tb

12-494 Tb 12-642 Tb 12-165 Tb 12-437 Tb 12-527 Tb 12-1150 Tb 12-393 Tb 12-394 Tb

Tb30 JF826130 12-136 Hm 12-966 Hm Hm860 HQ341793

12-729 Lc Lc1564 HQ341795 Lb287 HQ341794 12-510 Lc 12-1480 Lc 12-220 Lc 12-478 Tb 12-702 Lc 12-1428 Lb 12-772 Mch

My258 HQ341796 Genotipo 1

U22848 DUVV U22845 EBL

92

100

100

88

100

69

56

100

100

0,05

Histiotus macrotus

Lasiurus sp.

Myotis chiloensis

Tadarida

brasiliensis

TIPIFICACION GENETICA. VIRUS RÁBICO. 2012

SECCION RABIA. SUBDEPARTAMENTO GENETICA MOLECULAR

0.1

eblvfr32

duv320

Desmodus rotundus Canada

Tadarida brasiliensis Brasil

Vampiro Peru

Myotis sp. california

Myotis evotis

Lasiurus borealis Texas

Lasiurus cinereus USA

Insectivourus bat Canada

Tadarida brasiliensis USA

Tadarida brasiliensis Canada

Histiotus sp.Chile

Cat Chile

Domestic

animals Chile

Myotis sp. Chile

Lasiurus sp. Chile

Tadarida brasiliensis Chile

91

87

73

97

97

93

87

66

Genetic and antigenic typing of rabies virus in Chile. Yung V, Favi M, Fernández J. Arch Virol. 2002 Nov; 147(11):2197-205.

ISP realizó un estudio entre los años 1989-2005, donde se identificó

antigénica y genéticamente 4 reservorios de murciélagos presentes en Chile:

Myotis chiloensis Tadarida brasiliensis

Lasiurus. sp Histiotus.sp

Evolución de la Rabia Humana y Animal Chile 1950 al 2013*

0

100

200

300

400

500

600

700

50 53 56 59 62 65 68 71 74 77 80 83 86 89 92 95 98 101 104 107 110 113

AÑOS

CASOS E

N A

NIM

ALES

0

2

4

6

8

10

12

CASOS E

N H

UM

ANOS

HUMANA ANIMAL

actual

L C95%

89 94 97 00 03 05

0

0,04

0,08

0,12

0,16

91

Tendencia y Predicción de Positividad a Rabia

Suavizado Exponen.de Winters

Pro

po

rció

n M

urc

iéla

go

s P

osit

ivo

s

Años

Línea Predicción

Rabia en Chile: 1989-2005. 2008. Favi M, Rodriguez L, Espinosa C, Yung V. Revista

Chilena de Infectología., vol.25, suppl.1, p.s8-s13.

Positividad según estación del año

4417

2535

1480

2505

0

500

1000

1500

2000

2500

3000

3500

4000

4500

Total de

denuncias

verano otoño invierno primavera

Estaciones del año

108

74

15

101

0

20

40

60

80

100

120

Casos positivos

verano otoño invierno primavera

Estaciones del año

Gráfico Nº 3: Total denuncias por estación del año.

Periodo 2000-2009

Gráfico Nº 4: Casos positivos por estaciones del año.

Periodo 2000-2009

- El 70% de los casos positivos

se encuentran en época estival.

- El 30 % en otoño e invierno.

El 63,3 % de las denuncias son

realizadas en época estival

Descripción epidemiológica del reservorio de rabia en murciélagos de la Región

Metropolitana. Chile. 2000-2009 Myriam Favi C., Ángela Bassaletti C., Javier

López D., Luis Rodríguez A. y Verónica Yung P. Rev Chil Infect; 28 (3): 223-228

¿Donde viven?

• Edificios

• Techos de casas

Antecedentes de las muestras positivas

En 147 muestras diagnosticadas positivas se observó el lugar de captura del murciélago,

Correspondiente a un 49,3% del total. Los hallazgos se Clasificaron en 3 grupos:

Interior del inmueble, Exterior del domicilio y Vía pública.

Interior del inmueble, 89 casos (59,4%)

Exterior del domicilio, 45 casos (31,5%)

Vía Pública, 13 casos (9.1%)

Descripción epidemiológica del reservorio de rabia en murciélagos de la Región

Metropolitana. Chile. 2000-2009 (2011) Myriam Favi C., Ángela Bassaletti C., Javier

López D., Luis Rodríguez A. y Verónica Yung P. Rev Chil Infect; 28 (3): 223-228

Año Muestras recibidas Muestras positivas % de positividad

1995 1850 18 0,97

1996 2810 60 2,1

1997 2827 32 1,1

1998 2800 9 0,3

1999 4446 38 0,8

2000 3329 67 2,0

2001 2903 63 2,2

2002 2948 111 3,7

2003 2844 74 2,6

2004 3285 86 2,6

2005 3323 104 3,1

2006 2857 110 3,8

2007 2984 87 2,9

2008 2771 83 3,0

2009 1774 51 2,8

2010 2060 62 3,0

2011 1724 81 4,6

2012 1524 94 6,1

2013 1692 94 5,4

2014* 1179 73 6,2

Muestras

Diagnóstico

Rabia.

1995 - 2014

Interior de la sala de

un jardín infantil

Se encontró muerto

en el patio de la casa

contacto con el gato

Encontrado en el

patio de la casa ,

el perro estuvo

jugando

Se encontró en el

patio a la salida

de la puerta

trasera de la casa

Encontrado en el patio ,

perro estuvo jugando

con el murciélago

Capturado

por el gato

de

la casa

Capturado por

los animales

de la casa

Encontrado

en el

interior del

domicilio

Encontrado en un sofá

fue manipulado por los

dos hijos quienes sin

protección lo introdujeron

dentro del frasco

Murciélago

capturado

al interior

de la sala

de clases

Capturado con las

manos

descubiertas , intento

darle agua y lo

introdujo en la caja

Encontrado en la sala

de clases

Se encontraba volando en la

habitación del departamento Patio del domicilio

Punta arenas

Caso de Rabia Humana 1996

-Afectó a un niño de 7 años

-Sin antecedentes de mordeduras o contacto con

animales sospechosos

-Ingreso 13 febrero 1996

-Fallece 26 de Febrero 1996

Resultados de Laboratorio

o MUESTRA Título de Ac.( IFI)

o Suero 1 (11 días ) 1:625

o Suero 2 (25 días) 1:15.625

o LCR (25 días) 1: 125

o N.Corteza cerebral Negativo

o N. Cuerpo calloso Negativo

o N. Cerebelo Positivo

o Muestra de piel Positivo

Inmunofluorescencia

Directa

La caracterización antigénica con anticuerpos monoclonales se

identificó como variante 4 (origen Tadarida brasiliensis) realizada

por el INPPAZ en el mes de mayo de 1996.

Día 17-07-2013 ( CABT)

-Varón de 25 años, sano mientras transitaba en moto fue mordido

en la pierna derecha por varios perros callejeros en la comuna de

Quilpué.

-Primera atención 1ª dosis de vacuna antirrábica y suero

antitetánico, no recibe las restantes vacunas

Día 29-07-2013 (12 dias )

-Comienza con cefalea intensa y fotofobia que cede con

paracetamol

Caso Rabia Humana 2013

Día 03-08-2013 (17 dias )

-Posterior al alta comienza a presentar síndrome confusional, dificultad

para levantarse y caminar, persistencia de la cefalea y desorientación

tempero- espacial además de afasia de expresión y tetraparesia fláccida.

Evaluación por neurólogo sospecha Encefalomielitis Aguda diseminada

solicita traslado , se deriva a UCI del HGF

.

Caso Rabia Humana 2013

Día 04-08-2013: (18 días )

-Ingresa febril, hipertenso sin falla respiratoria, pupilas isocoricas reactivas

con signos meníngeos + rigidez de nuca y con agitación sicomotora.

-Es intubado e inmediatamente presenta una crisis convulsiva que se repite

en la madrugada del día de admisión

.

-Al examen neurológico de admisión: apertura ocular espontanea, reflejos

foto motor abolido, óculo cefálico +, hipertonía bilateral con reflejos

osteotendineos exaltados , plantares indiferentes y rigidez de nuca.

Caso Rabia Humana 2013

DIAGNOSTICO DE ADMISION

MENINGOENCEFALITIS A LCR CLARO

Examen 05-08-13 07-08-13

08-08-1 09-08-13

HSV I Negativo

HSV II Negativo

PCR V2V Negativo

Enterovirus Negativo

NeisseriaMen Negativo

Streptoccocus

Pneumoniae Negativo

Haemophilus

influenza Negativo

VDRL LCR Negativo

ADA LCR 5,8U/L(NL)

Panel estudio LCR

Fecha Toma

Muestra

Tipo

Muestra RIFFT IgG (cdc) IgM (cdc)

04/08/2013 LCR 0,5

06/08/2013 SUERO 31,7

06/08/2013 (*) LCR 2,5 1/50 1/10

12/08/2013 SUERO 53,27

12/08/2013 (*) LCR 3,62 1/50 1/10

15/08/2013 SUERO 70,2

15/08/2013(*) LCR 4,5 1/50 1/10

21/08/2013 LCR 0,36

23/08/2013 SUERO 10,7

02/09/2013 SUERO 3,31

10/09/2013 SUERO 1,63

Resultados laboratorio

Resultados RIFFT)

0,5 2,5 3,62 4,5

0,36

31,7

53,27

70,2

10,7

3,31 0

10

20

30

40

50

60

70

80 29/0

7/2

013

30/0

7/2

013

31/0

7/2

013

01/0

8/2

013

02/0

8/2

013

03/0

8/2

013

04/0

8/2

013

05/0

8/2

013

06/0

8/2

013

07/0

8/2

013

08/0

8/2

013

09/0

8/2

013

10/0

8/2

013

11/0

8/2

013

12/0

8/2

013

13/0

8/2

013

14/0

8/2

013

15/0

8/2

013

16/0

8/2

013

17/0

8/2

013

18/0

8/2

013

19/0

8/2

013

20/0

8/2

013

21/0

8/2

013

22/0

8/2

013

23/0

8/2

013

24/0

8/2

013

25/0

8/2

013

26/0

8/2

013

27/0

8/2

013

28/0

8/2

013

29/0

8/2

013

30/0

8/2

013

31/0

8/2

013

01/0

9/2

013

02/0

9/2

013

días evolución

AC

(U

I)

LCR

SUERO

Resultados CDC

26/08/2013

-Anticuerpos neutralizantes para virus rábico fueron detectados en 3

muestras de LCR, por la técnica de Inhibición de focos fluorescentes

(RIFFT).

-Anticuerpos IgG e IgM fueron detectados en 3 muestras de LCR, por la

técnica de Inmunofluorescencia.

Lo cual es consistente con infección por virus rábico, ya había sido

diagnosticado por ISP.

No se detectó antígeno rábico por Inmunofluorescencia Directa ni acido

nucleico de virus rábico por hemi-nested RT-PCR en biopsia de nuca.

No se detectó amplicones específicos en muestras de saliva por nested

RT-PCR con múltiples partidores, hasta la fecha.

Muestras requeridas *

Examen Periodicidad P

acie

nte

viv

o

Suero (3 ml)

Detección de Anticuerpos 2 veces por

semana

LCR (1 ML)

Detección de Anticuerpos y

Ácidos nucleicos

2 veces por

semana

Folículo piloso zona

occipital de la nuca

Detección de Antígeno y

Ácidos nucleicos

2 veces por

semana

Saliva (1 a 2 ml) Detección de Ácidos

nucleicos

Todos los días y

congelar

Pacie

nte

fallecid

o

Biopsia de cerebro

Detección de antígeno y

ácidos nucleicos

Confirmación diagnóstica de infección en caso sospecha de

encefalitis rábica

*Todas las muestras deben ser refrigeradas inmediatamente luego de ser tomadas si no es

posible enviar durante el día estas deben ser congeladas a -20ºC

Una vez realizado el diagnostico se tomaran muestras para el seguimiento de la evolución del

cuadro clínico del paciente

Muestras requeridas

Examen

Periodicidad P

acie

nte

viv

o

Suero (3 ml)

Detección de

Anticuerpos

2 veces por

semana

LCR (1 a 2 ml)

Detección de

Anticuerpos y

Ácidos nucleicos

1 vez por semana

Folículo piloso zona

occipital de la nuca

tomada con bisturí

desechable

Detección de

Antígeno y Ácidos

nucleicos

1 vez por semana

Saliva (1 a 2 ml) Detección de

Ácidos nucleicos

Todos los días y

congelar

La detección de ácidos nucleicos en cualquiera de las muestras del paciente permite la identificación

de la variante viral por Secuenciamiento genético.

Si el virus es aislado se realiza IFI con Anticuerpos Monoclonales y/o Secuenciamiento genético para

realizar la identificación de la variante viral.

Seguimiento de evolución de cuadro clínico

Conclusiones

La existencia de casos de rabia en murciélagos

constituye un riesgo real de rabia en humanos y

animales domésticos.

La especie Tadarida brasiliensis es el reservorio

mas importante en Chile

La pronta identificación de la variante implicada permite

la definición del cuadro epidemiológico lo que se

traduce inmediatamente en medidas de vigilancia y

control eficaces.

Esta enfermedad debe ser incluida en el diagnóstico

diferencial de las encefalitis aguda.

Esta situación epidemiológica pone de manifiesto

la necesidad de poner atención por parte del

médico tratante a los casos de neuropatías en

seres humanos, compatibles con la infección por

virus rábico, aunque no existan antecedentes de

exposición al virus.

Es necesario mantener un programa de control de rabia

dirigido a la educación de la población y además crear

conciencia en relación con la tenencia responsable de

los animales domésticos

Conclusiones

Gracias