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UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL FACULTAD DE CIENCIAS QUIMICAS ESCUELA DE QUÍMICA Y FARMACIA TRABAJO DE TITULACIÓN PRESENTADO COMO REQUISITO PREVIO PARA OPTAR POR EL GRADO DE QUÍMICO Y FARMACÉUTICO TEMA: “Determinación de valor nutricional y metales pesados en Manguifera indica cosechados en la Facultad de Ciencias Químicas” AUTORES: Barragán Santillán Jefferson Marcos Carrera Murillo Leonor Andrea TUTOR (A): Dr. Carlos Silva Huilcapi M.Sc. Guayaquil Ecuador 2019

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UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL

FACULTAD DE CIENCIAS QUIMICAS

ESCUELA DE QUÍMICA Y FARMACIA

TRABAJO DE TITULACIÓN PRESENTADO COMO REQUISITO PREVIO

PARA OPTAR POR EL GRADO DE QUÍMICO Y FARMACÉUTICO

TEMA:

“Determinación de valor nutricional y metales pesados en Manguifera indica

cosechados en la Facultad de Ciencias Químicas”

AUTORES:

Barragán Santillán Jefferson Marcos

Carrera Murillo Leonor Andrea

TUTOR (A):

Dr. Carlos Silva Huilcapi M.Sc.

Guayaquil – Ecuador

2019

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II

Agradecimiento

Agradezco a Dios por haberme prestado sabiduría para culminar con éxito

esta etapa.

A mi madre Sara, mi abuela Rosa y a mi tío Félix por haberme brindado

apoyo durante toda mi etapa estudiantil

A quien asumió el rol de padre conmigo, Erwin Vera, por su apoyo y por

haberme acogido en su familia.

A mi compañero de tesis y amigo Jefferson por permitirme realizar la tesis a

su lado y con quien hemos adquirido nuevos conocimientos.

A mi tutor Dr. Carlos Silva y a mis docentes por tener la paciencia de

inculcarnos con amor todos sus conocimientos e incentivarnos a descubrir el

maravilloso mundo de la investigación.

Dedicatoria

Esta tesis va dedicada a mi papá Bolívar Murillo quien aunque no esté

presente físicamente, siempre estará a mi lado.

A mi madre Sara Elizabeth por haberme dedicado su vida entera y levantarme en

los momentos difíciles.

Atentamente,

Andrea Carrera Murillo

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III

Agradecimiento

Reconozco el trabajo de nuestro tutor por guiarnos y compartir conocimientos que nos

ayudaron a cumplir nuestras expectativas. Exaltamos dicho trabajo y agradecemos con

creces por cumplir junto a nosotros una nueva meta, nuestro trabajo de titulación.

Dedicatoria

El presente trabajo de titulación va dedicado a Dios y a mis padres por el apoyo

permanente durante todos los años de estudios que fue lo primordial para cumplir mis

metas durante mi estadía en la universidad.

Atentamente,

Jefferson Barragán Santillán

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IV

ÍNDICE GENERAL

RESUMEN ............................................................................................................ XI

ABSTRACT .......................................................................................................... XII

INTRODUCCIÓN ................................................................................................... 1

CAPÍTULO I ........................................................................................................... 2

PROBLEMA ........................................................................................................... 2

1.1. Planteamiento del problema ...................................................................... 2

1.2. Formulación del problema ......................................................................... 2

1.3. Justificación e importancia ........................................................................ 3

1.4. Hipótesis ................................................................................................... 4

1.5. Objetivos ................................................................................................... 4

1.5.1. Objetivo general ................................................................................. 4

1.5.2. Objetivos Específicos ......................................................................... 4

1.6. Variables ................................................................................................... 5

1.6.1. Variables dependientes ...................................................................... 5

1.6.2. Variables independientes ................................................................... 5

CAPÍTULO II .......................................................................................................... 6

MARCO TEÓRICO ................................................................................................ 6

2.1. Antecedentes ............................................................................................ 6

2.2. Aspectos Teóricos..................................................................................... 7

2.2.1. Mangifera indica L. ............................................................................. 7

Clasificación taxonómica .............................................................................. 7

Descripción botánica .................................................................................... 8

Raíz. ......................................................................................................... 8

Tallo. ......................................................................................................... 8

Hojas. ........................................................................................................ 8

Flores. ....................................................................................................... 9

Frutos. ....................................................................................................... 9

Semilla. ..................................................................................................... 9

Valor nutricional del mango ........................................................................ 10

Variedades de mango ................................................................................ 10

Tommy Atkins ......................................................................................... 13

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V

Haden ..................................................................................................... 14

Kent ........................................................................................................ 14

Keitt.......................................................................................... ............... 15

Usos y aplicaciones del mango .................................................................. 15

2.2.2. Metales pesados .............................................................................. 16

Factores del huésped que influyen en la toxicidad de los metales .............. 17

Cadmio ....................................................................................................... 18

Fuentes de exposición ............................................................................ 19

Absorción, distribución y excreción. ........................................................ 20

Manifestaciones clínicas ......................................................................... 21

Tratamiento. ............................................................................................ 22

Plomo ......................................................................................................... 22

Fuentes de exposición ............................................................................ 23

Química y modo de acción. ..................................................................... 23

Absorción, distribución y excreción. ........................................................ 24

Manifestaciones clínicas ......................................................................... 24

Tratamiento ............................................................................................. 25

Mercurio ..................................................................................................... 26

Fuentes de exposición ............................................................................ 27

Química y modo de acción ...................................................................... 28

Absorción, distribución y excreción ......................................................... 29

Manifestaciones clínicas ......................................................................... 30

Tratamiento ............................................................................................. 31

2.2.3. Fundamentación legal ...................................................................... 32

CAPÌTULO III ....................................................................................................... 33

METODOLOGÍA DE LA INVESTIGACIÓN .......................................................... 33

3.1. Tipo de investigación .............................................................................. 33

3.2. Lugar de Investigación ............................................................................ 33

3.3. Lugar de Análisis..................................................................................... 33

3.4. Muestra ................................................................................................... 33

3.5. Materiales, Reactivos y Equipos ............................................................. 34

3.5.1. Materiales ......................................................................................... 34

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VI

3.5.2. Equipos ............................................................................................ 34

3.5.3. Reactivos .......................................................................................... 34

3.6. Muestreo ................................................................................................. 36

3.6.1. Recolección de muestras ................................................................. 36

3.6.2. Tipo de envase ................................................................................. 36

3.6.3. Requerimientos básicos de información ........................................... 37

3.7. Determinación de Valor Nutricional ......................................................... 37

3.7.1. Proteína: Método AOAC 995.04 Nitrógeno Total en Fertilizantes.

Método Kjedahl.............................................................................................. 37

3.7.2. Grasa: Método SM 5520 Aceite y grasa ........................................... 38

3.7.3. Cenizas: Método AOAC 942.05 Cenizas de alimentación animal ..... 39

3.7.4. Carbohidratos: Método ICUMSA....................................................... 40

3.8. Determinación de metales pesados ........................................................ 40

Digestión de la muestra: Sistema de digestión asistido por microondas ........ 40

3.8.1. Plomo: SM-3500-Pb-B ...................................................................... 41

3.8.2. Mercurio: Método APHA 3500-HG .................................................... 41

3.8.2.1. Operación del instrumento ......................................................... 41

3.8.2.2. Estandarización.......................................................................... 42

Análisis de muestras .................................................................................. 42

3.8.3. Cadmio: Método SM 3500-Cd .......................................................... 43

3.8.3.1. Pretratamiento de la muestra ..................................................... 43

3.8.3.2. Operación del instrumento ......................................................... 43

3.8.3.3. Análisis de muestras .................................................................. 44

Determinación directa ................................................................................ 45

CAPÌTULO IV ....................................................................................................... 46

RESULTADOS Y DISCUSIÓN ............................................................................. 46

4.1. Resultados .............................................................................................. 46

4.1.1. Determinación Valor Nutricional ....................................................... 46

4.1.2. Determinación de metales pesados .................................................. 47

4.2. Discusión ................................................................................................ 48

4.2.1. Determinación de Valor Nutricional ................................................... 48

4.2.2. Determinación de metales pesados .................................................. 50

CONCLUSIONES ................................................................................................ 52

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VII

RECOMENDACIONES ........................................................................................ 53

REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS ..................................................................... 54

ANEXOS .............................................................................................................. 57

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VIII

ÍNDICE DE TABLAS

Tabla I: Operacionalización de variables ................................................................ 5 Tabla II: Taxonomía del Mango .............................................................................. 7

Tabla III: Valor nutricional del mango ................................................................... 10 Tabla IV: Características de variedades de mango .............................................. 13 Tabla V: fuentes de contaminación por metales en los alimentos ........................ 17 Tabla VI: Fuentes de cadmio ............................................................................... 19 Tabla VII: Características de las diferentes fuentes de exposición ....................... 27

Tabla VIII: Límites CE .......................................................................................... 32 Tabla IX: Límites AOAC ....................................................................................... 32

Tabla X: Materiales .............................................................................................. 34 Tabla XI: Equipos ................................................................................................. 34

Tabla XII: Reactivos ............................................................................................. 35 Tabla XIII: Valor nutricional en Mango Reina ....................................................... 46

Tabla XIV: Valor nutricional en Mango Manzana .................................................. 47 Tabla XV: Metales pesados en Mango Reina....................................................... 47

Tabla XVI: Metales pesados en Mango Manzana ................................................ 47

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IX

ÍNDICE DE ILUSTRACIONES

Ilustración 1. Descripción botánica del mango ..................................................... 10 Ilustración 2. Variedades de mango ..................................................................... 12 Ilustración 3. Variedad Tommy Atkins .................................................................. 13 Ilustración 4. Variedad Haden .............................................................................. 14 Ilustración 5. Variedad Kent ................................................................................. 14 Ilustración 6. Variedad Keitt ................................................................................. 15 Ilustración 7. Concentraciones sanguíneas y manifestaciones del plomo ............ 25 Ilustración 8. Concentraciones y manifestaciones del cadmio .............................. 31 Ilustración 9. Plano de la entrada de la Facultad de Ciencias Químicas .............. 36

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X

ÍNDICE DE GRÁFICOS

Gráfico 1. Porcentajes obtenidos en el Mango Reina ........................................... 48 Gráfico 2. Porcentajes obtenidos en el Mango Manzana ..................................... 49

Gráfico 3. Determinación de Plomo en Mango ..................................................... 50 Gráfico 4. Determinación de Cadmio en Mango ................................................... 50 Gráfico 5. Determinación de Mercurio en Mango ................................................. 51

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XI

RESUMEN

El presente trabajo se realizó para la determinación de valor nutricional y

presencia de metales pesados (Pb, Cd y Hg) en muestras de mangos que han

sido cosechados en la Facultad de Ciencias Químicas de la Universidad de

Guayaquil. Se analizaron dos muestras de las variedades predominantes en la

institución, las cuales fueron: Reina y Manzana. En la determinación de valor

nutricional encontramos valores por debajo de las referencias nutricionales

establecidas por Stafford para esta fruta. En el caso de determinación de metales

pesados no encontramos traza alguna de presencia de plomo y mercurio en este

alimento, sin embargo para el caso del cadmio encontramos trazas por debajo de

los valores referenciales estipulados en las normativas internacionales.

Palabras claves: mango, valor nutricional, metales pesados, Ciencias Químicas.

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XII

ABSTRACT

The present work was carried out for the determination of nutritional value and

presence of heavy metals (Pb, Cd and Hg) in samples of mangoes that have been

harvested in the Faculty of Chemical Sciences of the University of Guayaquil. Two

samples of the predominant varieties in the institution were analyzed, which were:

Queen and Apple. In the determination of nutritional value we found values below

the nutritional references established by Stafford for this fruit. In the case of

determination of heavy metals, we did not find any trace of the presence of lead

and mercury in this food, however in the case of cadmium we found traces below

the reference values stipulated in international regulations.

Key words: mango, nutritional value, heavy metals, Chemical Sciences faculty.

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INTRODUCCIÓN

Los metales pesados son parte de la corteza terrestre y han estado en el planeta

tierra desde su formación, poseen una alta densidad con valores que van desde

4.5g/cm3 hasta 7 g/cm3, de los cuales entre los más conocidos y tóxicos tenemos

al plomo, mercurio y cadmio; actualmente se acepta que la movilidad, distribución

y disponibilidad de estos elementos tóxicos en los humanos es dependiente de la

concentración y de la forma química en la que se encuentren.

El consumo de fruta es parte esencial en la dieta ecuatoriana por lo que se

debería realizar un control de calidad a este alimento que permita identificar

contaminantes como metales pesados y conocer el valor nutricional del fruto que

ingerimos cumpla con los requerimientos mínimos que aporten los macro y micro

nutrientes necesarios para el organismo.

A nivel mundial se ha investigado acerca de la presencia de los metales tóxicos en

los alimentos y los efectos que el consumo de éstos ejerce sobre la salud humana,

por lo cual instituciones como la FAO y la Unión Europea han establecido límites

permisibles que garanticen su inocuidad al momento de consumirlos.

En el caso de nuestro país, Ecuador, la información es escasa y no existe una

normativa que regule los requerimientos mínimos de nutrientes en los alimentos ni

su inocuidad alimentaria.

En el presente estudio se determinó el valor nutricional y la presencia de tres

metales pesados: Pb, Cd y Hg en dos muestras de mango conocidos como Mango

Manzana y Mango Reina que son de alto consumo en la Facultad de Ciencias

Químicas perteneciente a la Universidad de Guayaquil.

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CAPÍTULO I

PROBLEMA

1.1. Planteamiento del problema

Es necesario hacer una evaluación de la concentración de metales pesados

(plomo, mercurio y cadmio), que pueden estar presentes en este el mango debido

a que las plantas son sistemas captadores de estos metales.

Las trazas de metales pesados dentro de las plantas, se pueden absorben

por medio de las raíces o vía foliar procedente del medio ambiente (suelo, aire,

agua) y son consideradas tóxicas debido a la bioacumulabilidad en el organismo.

La toxicidad de metales pesados está caracterizada por el elemento

metálico, pero es modificada por el tipo de compuesto: orgánico o inorgánico y sus

características de hidro o liposolubilidad, que determina su toxicocinética y su

posibilidad de alcanzar sus dianas. Las biomoléculas más afectadas son las

proteínas con actividad enzimática por lo que su patologíaes multisistema. Los

principales sistemas afectados son el gastrointestinal, neurológico central y

periférico, hemático y renal. Algunos de los compuestos metálicos son

carcinógenos. (Ferrer, 2013)

1.2. Formulación del problema

Los mangos cosechados en la facultad de Ciencias Químicas ¿Contendrán

metales pesados que influyan en el valor nutricional de esta fruta?

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1.3. Justificación e importancia

Las frutas representan un importante porcentaje de la dieta humana, por lo

que es necesario conocer la calidad con la que estos productos llegan hasta el

momento de su consumo.

La contaminación de con metales pesados puede ser proveniente de varias

fuentes, como el agua para riego contaminada; del suelo y sus características propias

, debido a que algunos suelos son ricos en ciertos metales pesados; por la

contaminación atmosférica, residuos de plaguicidas y fertilizantes utilizados durante

los periodos de siembra y desarrollo de la planta. (Londoño Franco & al, 2016)

Todas las plantas absorben metales del suelo en donde se encuentran, pero

en distintas proporciones que dependen de la especie vegetal, de las características y

contenido en metales del suelo y de la naturaleza del contaminante. Existen plantas

que tienen la capacidad de acumular grandes cantidades de metales pesados, son

conocidas como hiperacumuladoras. (Fiallos, 2017)

En las plantas, la palabra bioacumulación se refiere a la agregación de

contaminantes; algunos de ellos son más susceptibles a ser fitodisponibles que

otros.

Dentro de los metales pesados, encontramos los denominados

oligoelementos que sirven como micronutrientes para los cultivos y son requeridos

en pequeñas cantidades necesarias para que los organismos completen su ciclo

vital pero pasados los límites máximos admisibles se vuelven tóxicos, como el B,

Co, Cr, Cu, Mo, Mn, Ni, Fe, Se y Zn y el metaloide As. Existen también metales

pesados sin función biológica conocida, cuya presencia en determinadas

cantidades conlleva a una disfuncionalidad en el funcionamiento del organismo

humano en seres vivos lleva aparejada disfunciones en el funcionamiento de sus

organismos y resultan altamente tóxicos presentando la propiedad de acumularse

en los organismos vivos, elementos como el Cd, Hg, Pb, Sb, Bi, Sn, Tl. (Fiallos,

2017)

Actualmente existe escasa información acerca del contenido de metales

pesados en frutas, pero se debe concientizar en la responsabilidad de consumir

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productos de buena calidad debido a que muchos de estos metales generan

toxicidad en el organismo y en muchos casos son cancerígenos. La ingesta

excesiva de metales pesados y la bioacumulación incrementa los riesgos de

desarrollar cáncer de piel, pulmón, hígado o estómago. (Flórez, 2014)

1.4. Hipótesis

Los mangos cosechados en la Facultad de Ciencias Químicas de la

Universidad de Guayaquil poseen en su composición metales pesados que al

ingerirse producen toxicidad a los consumidores.

1.5. Objetivos

1.5.1. Objetivo general

Determinar el valor nutricional y metales pesados que podrían estar

presentes en el mango que se cosecha y consume en la facultad de Ciencias

Químicas.

1.5.2. Objetivos Específicos

Evaluar el valor nutricional del mango cosechado en la facultad de Ciencias

Químicas, utilizando como referencia la composición nutricional establecida

por Stafford adoptada por la FAO

Cuantificar mediante espectrofotometría la presencia de tres metales

pesados: Plomo, Mercurio y Cadmio en las muestras obtenidas.

Comparar los resultados obtenidos con los límites máximos permisibles

dados por organismos internacionales como la reglamentación de la Unión

Europea

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1.6. Variables

1.6.1. Variables dependientes Determinación de metales pesados

Determinación de valor nutricional.

1.6.2. Variables independientes Variedades de mango

Métodos de cuantificación

Tabla I: Operacionalización de variables

Tipo Variable Descripción Indicador Valores

Valoración de

Determinación metales pesados Cualitativa y Unidades

de metales Pb, Hg y Cd por cuantitativa ppm

pesados

técnicas

Dependiente espectrométricas

Determinación

Valoración del valor nutricional Cualitativa y

de

valor

Porcentaje por métodos cuantitativa nutricional.

AOAC

Características Color,

Variedades de de los tipos de

tamaño,

Gramos mango mango: Reina y

peso

Manzana

Procesos que

Independiente permiten la determinación de

Métodos de sustancias Cualitativa y Porcentual cuantificación químicas y cuantitativa

elementos

presentes en una

muestra

Fuente: Barragán & Carrera, 2019

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CAPÍTULO II

MARCO TEÓRICO

2.1. Antecedentes

Los elementos metálicos se encuentran presentes en el agua y en los

alimentos. Esta presencia es necesaria como en el caso de los metales esenciales,

pero resulta tóxica cuando se trata de alguno de los elementos más peligrosos, por

ejemplo, la presencia de plomo en el agua procedente de las tuberías. Algunas de las

epidemias tóxicas alimentarias más graves han implicado elementos metálicos, como

el Hg en la enfermedad de Minamata o de las producidas por compuestos

organomercuriales empleados como fungicidas. (Ferrer, 2013)

El impacto causado en salud por exposición prolongada o por

bioacumulación de metales pesados depende del tipo de metal o metaloide, se

producen afecciones que van desde daños en órganos vitales hasta desarrollos

cancerígenos. (Reyes, Vergara, & Torres, 2016)

La Conferencia Internacional FAO/OMS sobre Nutrición, oficializada en la

ciudad de Roma en noviembre de 2014, reiteró la importancia de la inocuidad de

los alimentos para lograr una mejor nutrición humana a través de una alimentación

sana y nutritiva para lograr los objetivos de desarrollo sostenible. Los gobiernos

deben elevar la inocuidad de los alimentos al rango de prioridad de salud pública,

aplicando sistemas eficaces en materia que permitan asegurar que los

productores y proveedores de productos alimenticios a lo largo de toda la cadena

alimentaria actúen de manera responsable y logren suministrar alimentos inocuos

a los consumidores. (OMS & FAO, 2014)

En la actualidad Ecuador no posee una normativa nacional que especifique

los niveles máximos de metales pesados permisibles en el fruto de mango por lo

que nos vemos en la necesidad de acogernos a las normativas internacionales

como el Códex Stan o los límites establecidos por la Unión Europea.

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2.2. Aspectos Teóricos

2.2.1. Mangifera indica L.

El Mango (Mangifera índica L.) es una fruta de la familia de las anacardiáceas

a la que también pertenecen el marañón y el pistacho. (Morante, 2009)

Sus características se manifiestan según la variedad pero es una fruta con

forma redonda o alargada, su tamaño puede variar hasta ciertas variedades que

sobrepasan el peso de un kilo. La cáscara posee diversas coloraciones

dependiendo de su estado de maduración: verde, amarilla y rojiza. Interiormente la

carne presenta coloración amarilla o anaranjada y tiene una semilla de forma

achatada, con cubierta fibrosa y una semilla en su interior. El sabor presenta

algunas alternativas: dulce, acido o con gusto a canela. (Morante, 2009)

Se cultiva en casi todos los países tropicales en todo el mundo. Es un árbol

de hojas perennes y su época de cosecha varía según las características

climáticas del lugar. (Morante, 2009)

Clasificación taxonómica

Esta planta es la de mayor importancia dentro de la familia de las

Anacardiaceae, esta familia reúne numerosas especies anacardo. (Saúco, 2009)

Tabla II: Taxonomía del Mango

Origen India

Familia Anacardiaceae

Reino Plantae División Magnoliophyta

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Subdivisión Magnoliophytina

Clase Rosidae

Orden Sapindales Género Mangifera

Especie Mangifera indica L.

Fuente: Saúco, 2009

Descripción botánica

El mango se caracteriza por ser una especie tropical arbórea, de tamaño

mediano a grande de un tamaño aproximado de 10 a 30 metros de altura. Es

considerado un árbol vigoroso, el cual le permite su desarrollo en suelos

relativamente pobres en donde el agua es escasa. (Vasquez, 2015).

Raíz.

Alcanza un máximo de 6 a 8 metros de profundidad, los primeros 50

centímetros son raíces absorbentes, la profundidad de las raíces es una

característica que le permite tener una tolerancia a las sales y una resistencia a la

sequía (Prieto, Covarrubias, & Figueroa, 2005).

Tallo.

Grueso, recto en su mayoría, forma cilíndrica de 75 a 100 cm de diámetro,

la corteza presenta una coloración gris, café o negruzca, con grietas longitudinales

poco profundas que contienen resina. Posee ramas gruesas y alargadas que le

otorgan la forma globular a la copa del árbol (Rodríguez, Guerrero, & Sandoval,

2002).

Hojas.

Tienen forma irregular a lo largo de las ramas, que determinan los periodos de

crecimiento de la planta. Su tamaño es de 5 a 35 cm de largo y de 2 a 10 cm de

ancho, sus bordes son ondulados y presentan nervios muy prominentes. El haz de

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la hoja es duro y brillante y presenta una coloración verde oscura y el envés tiene

una coloración amarilla verdosa (Rodríguez, Guerrero, & Sandoval, 2002).

Flores.

Provienen de una panícula que brota al final de las ramas, de color verde

amarillento y miden de 0.5 a 0.7 cm de diámetro cuando las flores se encuentran

extendidas y 0.2 a 0.4 cm de largo, estas características dependen de las

variedades (González, 2010).

Frutos.

Crece de forma individual y en algunas ocasiones en racimos, con una

cáscara externa llamado exocarpo, una drupa carnosa comestible o mesocarpio y

el endocarpio el cual cumple la función de envolver a la semilla. El color es variado

puede ser entre verde, amarillo o rojo. Su forma por lo general es ovoidea o

redondeada. Su peso aproximadamente va desde 100 g hasta 2 kg por unidad y

su tamaño es de 4 a 25 cm de largo y de 1 a 10 cm de grosor (Riquero, 2017)

Semilla.

Cada fruto posee una sola semilla, cuya forma es ovoide y alargada y está

recubierta por un endocarpio leñoso y grueso al madurar. Existen dos tipos de

semilla: las monoembrióticas, que son aquellas que contienen un embrión cigótico

y las semillas poliembriónicas que poseen varios embriones de los cuales solo uno

de ellos es cigótico. (Riquero, 2017)

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Fuente:

Ilustración 1. Descripción botánica del mango

Mangoecuador,

2018

Valor nutricional del mango

Las propiedades nutritivas del mango le permite competir con gran variedad

de frutas tropicales debido a su alto contenido carbohidratos, pro-vitamina A,

vitamina B - Tiamina, riboflavina, niacina y ácido ascórbico, aunque posee pocas

cantidades de calcio, hierro y fósforo; bajo en calorías, grasas y sodio la

composición química varía con su estado de desarrollo, variedad y condiciones de

cultivo. Su valor calórico es aproximadamente de 62-64 calorías/100 g de pulpa.

(TRIANA, 2016).

Tabla III: Valor nutricional del mango

Elemento Cantidad

Agua 81.7 %

Proteínas 0.7 %

Grasas 0.4 %

Carbohidratos 16.8 %

Cenizas 0.4 % Fuente: Stafford, 1983

Variedades de mango

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Las variedades tienen diferentes nombres dependiendo de las tradiciones

de cada pueblo, peculiaridades de la fruta o lugares de cultivo; algunas tienen un

cultivo formal completamente estudiado pero la mayoría presentan características

muy diferentes entre sí, aún si se ubican dentro de la misma zona geográfica. Se

da el caso de que dentro de un mismo sector una misma variedad tiene diferentes

nombres. (Morocho, 2017)

Las variedades en el Ecuador se conocen por los nombres popularizados

en el agro que dependen de las características principales que presentan. El

mango de chupar posee forma ovalada, tamaño pequeño, cáscara amarilla, pulpa

fibrosa de sabor dulce. Es la variedad más popular del país y por consiguiente la

más cultivada y que se vende a mayor precio. (Morocho, 2017)

El mango blanco tiene forma ovalada, tamaño, cáscara amarilla con

pequeñas manchas café o negras, consistencia regularmente firme, pulpa de color

amarillo claro, no fibrosa y de sabor un poco simple; su consumo se lo hace

principalmente cortándolo en trozos. (Morante, 2009)

El mango de manzana, el cual su principal característica es el color rojo de

su cáscara, tiene forma más redondeada, pulpa color anaranjado, tiene como

particularidad la maduración rápida que llega a la fermentación con daño

inmediato de la fruta. (Morante, 2009)

También se pueden mencionar las siguientes variedades ecuatorianas,

entre las cuales tenemos: mango de canela, mango de bola, mango de comer,

mango de cuchillo, mango de papaya, mango de uva. (Morocho, 2017)

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Ilustración 2. Variedades de mango

Fuente: Diario “El Universo”, 2016.

Existen variedades conocidas popularmente como mango extranjero que

poseen mayor tamaño que las variedades “nacionales”. Existe una variedad que se

conoce como “pico de loro”, que es muy jugosa, su cáscara es de color verde en su

estado maduro, de un tamaño que alcanza aproximadamente 15 cm de largo; su

consistencia es regularmente firme, pulpa amarilla, sabor es dulce ligeramente ácido y

la pepa es pequeña con relación al tamaño total de la fruta. Por ser mayor su volumen

de producción entre las variedades “extranjeras “. (Morante, 2009)

Las variedades más conocidas comercialmente debido a su exportación

pueden ser agrupadas de acuerdo a su coloración.

Variedades amarillas: Ataulfo, Manila

Variedades rojas: Haden, Edward, Kent, Tommy Atkins, Zill

Variedades verdes: Alphonse, Julie, Amelie. Keitt. (Banchón &

Palma, 2018)

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Tabla IV: Características de variedades de mango

Variedad Tamaño Cosecha Forma Color Pulpa

Grande Amarillo- Jugosa,

Kent (500-680 Tardía Ovalada anaranjado poca fibra

g)

Rojiza(madurez)

Mediano

Ovalada- Amarillo-

Haden (380-500 Temprana anaranjado Poca fibra redonda

g)

Rojiza(madurez

Tommy Grande

Presencia (500-700 Mediana Ovalada Rojizo

Atkins de fibra g)

Mediano a

Keitt grande

Tardía ovalada Verde a

Sin fibra (600-700 amarillo-rojizo

g)

Mediano

Ataulfo (180-260 Tardía Alargada Amarillo Poca fibra g) Fuente: Banchón & Palma, 2018

Tommy Atkins

Originario de la Florida de la variedad Haden, aproximadamente de 13 cm de

largo y 450 a 700 gramos de peso, con forma ovoide a casi redonda, color con base

morado a rojizo, bastante resistente a los daños mecánicos debido a la cáscara

gruesa, carece de fibra, tiene buen sabor y de pulpa jugosa. (Ecuador, 2018)

Ilustración 3. Variedad Tommy Atkins

Fuente: Mangoecuador, 2018

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Haden

Una de las más antiguas de Florida, se originó de la variedad “Mulgoba”.

Tiene 14 cm. de largo y 400 a 600 gramos de peso, forma ovoide, redondeada de

fondo de color amarillo, sobre color rojizo con lenticelas de color blanco. La pulpa

es jugosa, casi sin fibra con sabor ligeramente ácido (Ecuador, 2018).

Fuente: Mangoecuador, Ilustración 4. Variedad Haden

2018

Kent

Originario de la variedad “Brooks”, la que a su vez provino de la variedad

“Sandersha”. Llega a medir13 cm ó más de longitud, con un peso promedio de 680

gramos. Posee forma ovoide redondeada con color base verde amarillento y

sobrecolor rojo oscuro y lenticelas pequeñas y amarillas. Tiene pulpa jugosa y

dulce, sin fibra. (Ecuador, 2018)

Fuente: Mangoecuador, Ilustración 5. Variedad Kent 2018

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Keitt

Se originó de una semilla de “Mulgoba”, en el año de 1.929 en Florida,

crece hasta 12 cm. y pesa de 600 a 700 gramos, su forma es ovalada, con color

base amarillo con numerosas lenticelas pequeñas, la pulpa es jugosa y dulce.

(Ecuador, 2018)

Ilustración 6. Variedad Keitt

Fuente: Mangoecuador, 2018

Usos y aplicaciones del mango

El fruto tiene una variada aplicación y una de las ventajas es que se lo

puede consumir de forma madura como inmadura, aunque tiene mayor uso

cuando el fruto llega a su madurez debido a que su pulpa es utilizada como

materia prima para la elaboración de productos como jugos, mango deshidratado,

jaleas, conservas, alimentos para niños, yogurt, helados, entre otros (Ajila, Aalami,

Leelavathi, & Prasada Rao, 2010).

Los principales subproductos que se obtienen del mango son la cáscara y la

semilla, los cuales dependiendo de la variedad y productos elaborados representan un

aproximado de entre 35 a 60% del peso total de la fruta (Ajila et al., 2010).

En los últimos años se han diseñado métodos para extraer la grasa de la

semilla del mango que es un ingrediente utilizado en la elaboración de medicamentos

naturales (Muchiri, Mahungu, & Gituanja, 2012; Jahurul et al., 2014).

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La cáscara de mango comprende aproximadamente 10% del peso total de

la fruta, este subproducto de la industria alimenticia posee una gran cantidad de

compuestos valiosos como carotenoides, enzimas, polifenoles, vitamina C y

vitamina E, los cuales son muy importantes y beneficiosos para la salud humana

debido a funciones antioxidantes, es por esto que son muy utilizados en el proceso

de elaboración de harinas (Ajila, Naidu, Bhat, & Prasada Rao, 2007).

Actualmente, la harina de la cáscara de mango es utilizada como

ingrediente en alimentos como fideos, bizcochos, pan, galletas y otros productos

de panadería (Aziz et al., 2012).

La madera del árbol no es apta para ser utilizada en construcciones debido

a que es propensa al ataque de hongos, pero si es debidamente tratada se la

utiliza en la fabricación de mobiliario, artesanías, elaboración de instrumentos,

accesorios para el hogar y en algunos países la utilizan como leña para la

obtención de calor (Carrillo et al., 2016)

2.2.2. Metales pesados

Un metal pesado es un elemento químico con densidad mayor a 4 g/cm3,

masa y peso atómico por encima de 20, y tóxico en bajas concentraciones. Entre

ellos encontramos: cadmio (Cd), mercurio (Hg), plomo (Pb), arsénico (As), cromo

(Cr), molibdeno (Mo), níquel (Ni), plata (Ag), selenio (Se), talio (Tl), vanadio (Va),

oro (Au), zinc (Zn), entre otros. (Londoño Franco & al, 2016).

Se considera generalmente, que los metales son perjudiciales, aunque

algunos son esenciales en la dieta humana y su deficiencia o exceso puede

conducir a problemas de salud, debido a que algunos no cumplen una función

fisiológica conocida, alteran la salud y es preferible evitar su ingesta. (Londoño

Franco & al, 2016)

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Los metales se encuentran de manera natural en el ambiente en

concentraciones que generalmente no causan perjuicios a las diferentes formas de

vida, pero los metales pesados no pueden ser degradados o destruidos, éstos

pueden ser disueltos por agentes físicos y químicos. Algunos forman complejos

solubles y son transportados y distribuidos a la cadena trófica (suelo, agua,

plantas, semillas y forrajes), en especial aquellos procedentes de áreas

contaminadas. (Londoño Franco & al, 2016)

Los metales pesados constituyen un riesgo considerable para la salud por

el contacto frecuente laboral y ambiental. Un indicador de su importancia en

relación con otros peligros potenciales es el rango que les adjudica la Agencia

Estadounidense para el Registro de Sustancias Tóxicas y Enfermedades, que

cataloga los riesgos de los desechos tóxicos de acuerdo con su prevalencia y la

gravedad de la intoxicación que originan. Entre los más peligrosos se encuentran

el plomo, el mercurio, el arsénico y el cadmio. (Londoño Franco & al, 2016)

Tabla V: fuentes de contaminación por metales en los alimentos

Origen de contaminación Metal pesado involucrado

Proveniente del suelo (Natural) Cadmio, bromo, flúor, cobre Uso de insecticidas, desinfectantes y

Arsénico, cobre, plomo, mercurio medicamentos

Por el equipo de procesamiento Cobre, hierro, níquel, estaño, plomo, zinc

Debido al almacenamiento Hierro, níquel, estaño, plomo, cadmio, estroncio

Por oxidación en el envase Hierro y cobre Debido al procesamiento Cobre, cadmio, arsénico

Fuente: Londoño et al, 2016

Factores del huésped que influyen en la toxicidad de los metales

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La interacción de los metales tóxicos con los metales esenciales se produce

cuando el metabolismo de un metal tóxico se asemeja al del elemento esencial. La

absorción de los metales tóxicos en los pulmones o en el tubo digestivo depende

de un metal esencial, especialmente si el tóxico comparte o influye sobre algún

mecanismo homeostático como en el caso del plomo, el calcio y el hierro. Los

metales tóxicos pueden afectar la función que desempeñan los metales esenciales

como cofactores de las enzimas o en otros procesos metabólicos. Existen

complejos de metaloproteínas que intervienen en la bioinactivación o protección

contra los efectos tóxicos de unos pocos metales. (Goyer & Clarkson, 2005)

Tanto los niños como los ancianos, son más vulnerables a la exposición a

una determinada concentración de un metal. La principal vía de exposición a

muchos metales tóxicos son los alimentos, y el consumo de calorías por kilo de

peso es mayor. La absorción digestiva de los metales, y en especial del plomo,

también es mayor. La rapidez del crecimiento y de la división celular que

experimenta el cuerpo de estos grupos ofrece una buena oportunidad para la

aparición de los efectos genotóxicos. (Goyer & Clarkson, 2005)

Cadmio Latín: cadmia

Griego: kadmeia, significa “calamina”

Descubierto en Alemania en 1817 por Friedrich Stromeyer como impureza en

el carbonato de zinc. El cadmio es suave al tacto y de color blanco plateado, no se

halla en el ambiente como un metal puro, se encuentra formando óxidos complejos,

sulfuros y carbonatos en el cinc, plomo y menas de cobre. (Pérez & Azcona, 2012).

Es un metal que se encuentra en la corteza terrestre y se presenta en

combinación con el zinc. Se considera un contaminante y se libera al ambiente como

subproducto de la extracción de cobre, hierro y zinc. La exposición al Cd puede

producir una variedad de efectos adversos en los humanos. Una vez absorbido se

acumula en el organismo por largo tiempo y dependiendo de la dosis, fuente y tipo

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de exposición puede dañar varios órganos como: hígado, riñón, pulmón, hueso,

testículos y placenta. Los seres humanos están expuestos al Cd principalmente a

través de la ingesta de alimentos y del agua y aire contaminados con el metal. La

entrada de Cd a las células no es uniforme en todos los sistemas y está mediada

por transporte pasivo o activo, o por canales de calcio. Se considera que uno de

los mecanismos de toxicidad de este metal es debido a las especies reactivas de

oxígeno, que pueden actuar como segundos mensajeros y alteran diferentes vías

de señalización. (Martínez Flores, 2013).

La mayor cantidad de Cd en el suelo proviene del uso de fertilizantes de

fosfatos para la agricultura, lo cual produce que se acumule a lo largo de la

cadena alimenticia.

Se le reconoce como uno de los metales pesados con mayor tendencia a

acumularse en las plantas. El cadmio causa severos desequilibrios en los

procesos de nutrición y transporte de agua en ellas. La acumulación de cadmio en

las plantas ha llevado a considerarlas como potenciales candidatos para tareas de

fitoremediación de este metal. (Reyes, Vergara, & Torres, 2016)

Tabla VI: Fuentes de cadmio

Antropogénicas Naturales

Lodos residuales y estiércol

Fertilizantes fosfatados y nitrogenados Actividad volcánica Industria de plateado y galvanizado

Minería

Industria de fundición de metales

Incineración Rocas Industria de alimentos fosfatados para

animales

Fuente: Pérez & Azcona, 2012

Fuentes de exposición

La comida y los cigarrillos son las principales fuentes de exposición al

cadmio en la población general, más de 80% del cadmio ingerido proviene de

cereales, verduras, raíces y frutas. (Pérez & Azcona, 2012).

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La ingestión diaria normal con la dieta (IDD) establece como valor límite

tolerable 7 μg/semana por kg de peso. Por vía digestiva, consumos de hasta 100

mg producen síntomas gastrointestinales, mientras que a partir de los 350 mg se

considera que es potencialmente mortal. En el 2010 el Comité Mixto de la

Organización de Agricultura y Comida de Estados Unidos (FAO), la Organización

Mundial de la Salud (OMS) y el Comité de Expertos en Aditivos Alimentarios

(JECFA) determinaron un insumo mensual tolerable provisional en los alimentos

de 25 μg por kg de peso corporal, mientras que la OMS fijó una ingestión semanal

tolerable provisional de 7 μg/kg de peso corporal. A nivel gastrointestinal la

absorción es del 8% (García & Cruz, 2015).

Se ha asociado la exposición a Cd con una alta mortalidad por cáncer

debido a que se ha identificado que el Cd regula la expresión del gen AEG-1, cuya

proteína codificada es importante para el desarrollo del tumor, progresión y

metástasis. Sin embargo, el mecanismo molecular carcinogénico del Cd no se

conoce con exactitud. (Martínez Flores, 2013)

Química y modo de acción.

El Cd existe como Cd2+ y no experimenta reacciones de oxidación-

reducción. El mecanismo de toxicidad del Cd no se ha estudiado por completo

pero puede reemplazar al cinc en los dominios y trastornarlos. Este metal induce

la formación de ROS y produce lipoperoxidación y agotamiento de glutatión,

aumenta la formación de citocinas inflamatorias y puede alterar los efectos

benéficos del óxido nítrico. (Goodman & Gilman, 2015)

Absorción, distribución y excreción.

El Cd no se absorbe bien en el tubo digestivo sólo del 1.5 a 5%), en su mayor

parte se distribuye primero a través del hígado y luego del riñón; ambos órganos

representan 50% de la dosis absorbida, poco Cd cruza la barrera hematoencefálica

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o la placenta y se excreta sobre todo en la orina, posee una t1/2 de 10 a 30 años.

(Goodman & Gilman, 2015)

Manifestaciones clínicas

Las manifestaciones clínicas de la exposición al cadmio pueden clasificarse,

de acuerdo al tiempo y modo de dicha exposición, en agudas y crónicas.

Efectos tóxicos agudos.

Los síntomas son: náuseas, vómitos, dolores abdominales y cefalea.

Presentándose casos de diarrea intensa con colapso. Dichos síntomas aparecen

al ingerir agua o alimentos con cadmio en concentraciones de alrededor de

15ppm, que llevan incluso al choque anafiláctico. (Pérez & Azcona, 2012)

Efectos tóxicos crónicos.

Se han observado efectos, como: anemia, alteraciones hepáticas y cambios

en el metabolismo de los minerales. Inclusive una exposición crónica

relativamente baja puede causar daños irreversibles a los túbulos renales, que dan

lugar a daño glomerular y a insuficiencia renal. Existen riesgos potenciales que

pueden ocurrir tiempo después de la exposición como el riesgo de cáncer y en la

salud reproductiva. (Pérez & Azcona, 2012)

Otros efectos tóxicos.

El cadmio afecta al metabolismo del calcio y se presentan anomalías

óseascomo dolor óseo, osteomalacia y osteoporosis, debido a la pérdida de calcio,

Estudios epidemiológicos indican que el cadmio podría ser una causa de

hipertensión arterial idiopática debido a que el origen de la disminución de la

contractilidad miocárdica inducida por el cadmio esté en las mitocondrias cardíacas.

También se han identificado una relación entre los trastornos de la conducta y la

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disminución de la inteligencia en los niños y los adultos expuestos al cadmio.

(Goyer & Clarkson, 2005)

Tratamiento.

Los pacientes expuestos a Cd inhalado requieren apoyo respiratorio. Los

individuos que sufren insuficiencia renal debida a envenenamiento por Cd pueden

requerir trasplante. El tratamiento de quelación para envenenamiento por Cd no

tiene beneficios clínicos y puede producir efectos secundarios. (Goodman &

Gilman, 2015)

Plomo

Latín: plumbum

Griego: moliubdos

Metal pesado no esencial conocido en Egipto al menos 4.000 años A.C.

Sus efectos tóxicos fueron descritos por Nicander quien escribió sobre una

enfermedad conocida como plumbismo, causada por una intoxicación aguda por

plomo. Posteriormente, a la intoxicación se le llamó saturnismo porque la alquimia

consideraba al plomo como el origen de los metales, y fue dedicado al dios

Saturno, considerado en la mitología como el primero de los dioses. (Rubio,

Gutiérrez, & Martín-Izquierdo, 2014)

Se encuentra en la naturaleza como mezcla de 3 isótopos (206, 207 y 208).

Su forma más abundante es el sulfuro (PbS), formando las menas de galena.

(Ferrer, 2013)

Posee la capacidad de bioacumularse por lo que su concentración en plantas y

animales se magnifica a lo largo de la cadena alimentaria. La contaminación

ambiental por plomo ha aumentado como ha quedado de manifiesto en las capas

secuenciales de hielo de Groenlandia. En 1780, en los comienzos de la Revolución

Industrial, 1 g de hielo contenía 10 pg de plomo. Doscientos años después, la

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concentración de plomo en 1 g de hielo era de 200 pg. (Rubio, Gutiérrez, & Martín-

Izquierdo, 2014)

Fuentes de exposición

El plomo y sus derivados se encuentran en el aire, plantas, animales de uso

alimentario, agua, suelo, etc. El agua de mar contiene entre 0,003 y 0,20 mg/L de

plomo por lo que las concentraciones de este metal en aguas marinas con-

tribuyen a la contaminación de los peces que habitan en ellas. (Rubio, Gutiérrez, &

Martín-Izquierdo, 2014)

En el suelo de terrenos no cultivados se han encontrado de 8 a20 mg Pb/Kg

mientras que en terrenos cultivados puede llegar a encontrarse por encima de 360

mg Pb/Kg y cerca de fuentes de contaminación industrial, el suelo alcanza

contenidos de 10 g Pb/Kg o más. (Rubio, Gutiérrez, & Martín-Izquierdo, 2014)

La dieta es una fuente importante de exposición de plomo. Un adulto sano

no expuesto ingiere diariamente de 0,3 a 0,5 mg de este metal, el 80% del mismo

es eliminado por el riñón. Si la ingesta es superior a 0,6 mg/día el plomo se

acumula y provoca una intoxicación. Los contenidos máximos de plomo en

productos alimenticios deben ser lo más bajos posible. (Rubio, Gutiérrez, & Martín-

Izquierdo, 2014)

Química y modo de acción.

El plomo divalente es la principal forma, los compuestos inorgánicos

tetravalentes de Pb no se encuentran en forma natural. Los complejos

organoplúmbicos ocurren especialmente con Pb tetravalente. La toxicidad es

generada por su semejanza molecular con otros metales divalentes,

especialmente cinc y calcio. Debido a su tamaño y afinidad electrónica altera la

estructura proteica y puede activar o inhibir en forma inapropiada la función

proteica. (Goodman & Gilman, 2015)

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Absorción, distribución y excreción.

La absorción aumenta en grado notable al ayunar. Las deficiencias

dietéticas de calcio o hierro acentúan la absorción, debido a que se absorbe por

medio de transportadores metálicos divalentes. (Goodman & Gilman, 2015)

Del Pb sanguíneo, cerca de 99% se une a la hemoglobina. Se distribuye de

modo inicial en los tejidos blandos, en particular en el epitelio tubular del riñón y el

hígado y al final se redistribuye y se deposita en huesos, dientes y cabello. Cruza

con facilidad la placenta. Se excreta en la orina y su concentración en ella es

directamente proporcional a su concentración en plasma. Se elimina en la leche y

el sudor y se deposita en cabello y uñas. La t1/2 del Pb en suero es de uno a dos

meses y su concentración estable se adquiere en aproximadamente 6 meses. El

Pb acumulado en huesos tiene una t1/2 calculada de 20 a 30 años (Goodman &

Gilman, 2015).

Manifestaciones clínicas

Se dan dependiendo del tipo de intoxicación que se clasifica en: aguda y

crónica

Efectos tóxicos agudos

El diagnóstico de intoxicación aguda por plomo es difícil, y se basa en los

síntomas iniciales, pudiendo diagnosticarse erróneamente como apendicitis, úlcera

péptica, cólico vesicular, pancreatitis o meningitis infecciosa. Este cuadro que

incluye cefalea, fatiga, cólicos abdominales intermitentes, mialgias y artralgias,

también ha sido diagnosticado erróneamente como cuadro viral seudogripal. En

caso de ingestión se identifican imágenes radiopacas en las radiografías.

(Katzung, 2013)

Efectos tóxicos crónicos

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El cuadro inicial suele incluir signos en múltiples órganos y sistemas, que

incluyen anorexia, fatiga y malestar general; manifestaciones del sistema nervioso

como cefalea, dificultad para la concentración, irritabilidad o depresión; debilidad,

artralgias o mialgias y síntomas de tubo digestivo. (Corzo & Velásquez, 2014)

El diagnóstico de saturnismo es confirmado al medir la concentración de

plomo en sangre completa. Esta valoración refleja el plomo que circula en ese

momento en la sangre y no es un marcador fiable de la exposición reciente o

acumulativa al metal; muchos individuos con trastornos por plomo tienen

concentraciones del metal en la sangre mayores que las cifras normales.

(Katzung, 2013)

.

Ilustración 7. Concentraciones sanguíneas y manifestaciones del plomo

Fuente: (Goodman & Gilman, 2015)

Tratamiento

La respuesta más importante al envenenamiento por Pb es la eliminación

de la fuente de exposición. Se deben tomar medidas de apoyo para aliviar los

síntomas. El tratamiento de quelación es imprescindible para niños y adultos con

altas concentraciones de Pb en sangre (> 45 mg/100 ml y > 70 mg/100 ml,

respectivamente) o síntomas agudos de envenenamiento por Pb. Aunque el

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tratamiento de quelación es efectivo para disminuir las cifras de Pb en sangre y

aliviar los síntomas inmediatos, no reduce los efectos crónicos del Pb más allá del

beneficio de la mera disminución. (Goodman & Gilman, 2015)

Mercurio Laín: mercurius

Griego: hydragyros

Es el único metal que a temperatura ambiente se encuentra en estado

líquido y su vapor es más peligroso que el metal líquido.

Existen tres formas químicas: mercurio elemental (Hg0), compuestos

inorgánicos mercuriosos (1+) y mercúricos (2+) y compuestos orgánicos como el

alquilo, fenilo, que se unen en enlace covalente a un átomo de C. La sal mercúrica

logra formar numerosos compuestos orgánicos estables. Cada estado de

oxidación y cada especie orgánica, provoca efectos característicos sobre la salud.

(Goyer & Clarkson, 2005)

El mercurio (Hg) se ha usado de manera industrial desde la antigua Grecia

por su capacidad para formar amalgamas con otros metales. (Goodman & Gilman,

2015)

Su utilización en el tratamiento de la sífilis inspiró la frase célebre de

Paracelso “la dosis hace al veneno”, que conforma un concepto central de la

toxicología. La frase “loco como un sombrerero” nació de la exposición de los

sombrereros al vapor del Hg metálico producido por el fieltro para los sombreros,

en la que se usa nitrato de mercurio. (Goodman & Gilman, 2015)

Su toxicidad se conoce desde la antigüedad. Plinio describe la intoxicación del

mercurio como la enfermedad de los esclavos y recomendaba a los ciudadanos

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romanos no trabajar en las minas de Almadén para evitar la inhalación de vapores

nocivos. (Llop & al, 2013)

La OMS considera niveles normales de Hg en sangre los inferiores a 10 μg/l

y en orina de 20 μg/L.

El Comité de Expertos en Aditivos de Comida (JECFA) estableció una

ingesta tolerable de 1,6 μg/kg del peso corporal por semana de metilmercurio con

fines de proteger la aparición de efectos neurológicos en el feto. (Osores,

Grandez, & Fernández, 2010)

Fuentes de exposición

La principal fuente de ingreso hacia las cadenas tróficas alimenticias es el

mercurio metálico que llega al aire en forma de vapor y luego precipita, o aquel que es

vertido directamente a los suelos y cuerpos de agua, que permite la formación de

metilmercurio que es un compuesto organometálico de mercurio altamente liposoluble

y tóxico que atraviesa las membranas celulares y de allí pasa a los sistemas

enzimáticos de la célula humana. (Osores, Grandez, & Fernández, 2010)

Tabla VII: Características de las diferentes fuentes de exposición

Forma química Fuente Ruta de

Eliminación Toxicidad exposición

Amalgamas SNC dentales

Metálico o Orina Renal Orfebrería Inhalatoria

elemental Heces Piel artesanal

Pulmonar Termómetro

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Remedios

folclóricos(naturist

as)

Erupciones

volcánicas

Timerosal

Inorgánico o Cosméticos SNC

Ampolletas Digestiva

Renal sales de Orina

Productos Cutánea Piel mercurio

fotográficos Pulmonar

Desinfectantes

Pescados

Digestiva

Orgánico o Transplacent

SNC Preservantes Heces

metilmercurio aria Cardiovascular Fungicidas

Parenteral

Fuente: (Valderas & al, 2013)

Química y modo de acción

Dentro de las tres formas generales de importancia para la salud humana

se encuentran:

El mercurio metálico o elemental (Hg0) que es el metal líquido encontrado

en termómetros y amalgamas dentales; es bastante volátil y la exposición suele

ser al vapor.

El mercurio inorgánico que puede ser monovalente o divalente y forma

diversas sales.

Los compuestos de mercurio orgánico consisten en mercurio divalente en

complejo con uno u ocasionalmente dos grupos alquilo. El compuesto orgánico de

mercurio de mayor preocupación es el metilmercurio (MeHg+), que en el ambiente

es formado por organismos acuáticos a partir de mercurio inorgánico.

El mercurio divalente y el metil mercurio crean con facilidad enlaces

covalentes con azufre, esta interacción genera la mayor parte de los efectos

biológicos del mercurio. A muy bajas concentraciones, el mercurio reacciona con

residuos de sulfhidrilo en las proteínas y trastorna sus funciones. También puede

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haber un componente autoinmunitario en la toxicidad del mercurio. (Goodman &

Gilman, 2015)

Absorción, distribución y excreción

La absorción gastrointestinal del Hg elemental es ínfima. El mercurio metálico

absorbido se distribuye a través del cuerpo y cruza membranas como la barrera

hematoencefálica y la placenta mediante difusión. (Goodman & Gilman, 2015)

El mercurio metálico es oxidado por la catalasa en los eritrocitos y otras

células para formar mercurio divalente. Una parte del mercurio metálico se elimina

por exhalación. (Goodman & Gilman, 2015)

La absorción gastrointestinal de sales de Hg promedia aproximadamente

de10 a 15%, pero varía con el paciente individual y la sal ingerida. El mercurio

monovalente forma mercurio metálico o mercurio divalente en presencia de grupos

sulfhidrilo. El mercurio divalente se excreta en orina y heces; una pequeña

cantidad también puede reducirse a mercurio metálico y exhalarse. La eliminación

por vía fecal predomina con la exposición, la excreción por orina es predominante

en la exposición crónica. Todas las formas de mercurio también son eliminadas

por medio del sudor y leche y se depositan en cabello y uñas. La t1/2 para Hg

inorgánico es de uno a dos meses. (Goodman & Gilman, 2015)

El metilmercurio ingerido de manera oral se absorbe casi por completo

desde el tubo digestivo y cruza con facilidad la barrera hematoencefálica y la

placenta y se distribuye en forma uniforme en los tejidos, aunque se encuentran

concentraciones más altas en los riñones. El metilmercurio se puede desmetilar

para formar mercurio divalente inorgánico. (Goodman & Gilman, 2015)

El hígado y el riñón poseen las tasas más altas de desmetilación, pero este

proceso también ocurre en el cerebro. El metilmercurio se excreta en orina y heces,

siendo predominante la vía fecal. La t1/2 para metilmercurio es aproximadamente de 2

meses. Los complejos entre el metilmercurio y la cisteína son semejantes a la

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metionina, existiendo transportadores de este aminoácido que pueden

reconocerlos y llevarlos a través de las membranas. (Goodman & Gilman, 2015)

Manifestaciones clínicas Efectos tóxicos agudos

Entre los efectos por intoxicación aguda tenemos neumonitis química y

edema pulmonar no cardiógeno, también puede presentarse gingivoestomatitis

aguda y surgir secuelas neurológicas. La ingestión de sales de mercurio puede

originar gastroenteritis hemorrágica corrosiva que a veces es letal debido a que

desencadena una necrosis tubular aguda. (Katzung, 2013)

Efectos tóxicos crónicos

La intoxicación crónica por mercurio se presenta temblores, hipertrofia de

tiroides, taquicardia, gingivitis, cambios en la personalidad, eretismo, pérdida de

memoria, depresión severa, delirios y alucinaciones. Los tres rasgos más usados

para reconocer la enfermedad profesional en la industria son la excitabilidad, los

temblores y la gingivitis.

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Ilustración 8. Concentraciones y manifestaciones del cadmio

Fuente: (Goodman & Gilman, 2015)

Tratamiento

Retirar al paciente de la fuente intoxicante, prestar apoyo de carácter

ventilatorio, y administrar terapéutica quelante de acuerdo con las concentraciones

del metal en sangre y orina. Si se trata de una ingestión por vía oral hay que

provocar su eliminación mediante vómitos, lavado gástrico, administración de

carbón activado y catárticos salinos. Al mismo tiempo se iniciará terapéutica

quelante: el dimercaprol en casos de exposición grave, penicilamina en casos

moderados o aplicar hemodiálisis con administración del quelante para que el

complejo quelante-mercurio sea sustraído por la diálisis. (Flórez, 2014)

En el caso del metilmercurio y sus semejantes, el tratamiento de la

intoxicación se realiza con la administración de penicilamina a dosis más altas (2

g/día) y es recomendable asociarla a productos que, por vía oral, fijen el mercurio

y no sean reabsorbidos. (Flórez, 2014)

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2.2.3. Fundamentación legal Según la Ley Orgánica de Salud, Libro I, Capitulo II De la alimentación y

nutrición, art. 16 señala que “El Estado establecerá una política intersectorial de

seguridad alimentaria y nutricional, que propenda a eliminar los malos hábitos

alimenticios, respete y fomente los conocimientos y prácticas alimentarias

tradicionales, así como el uso y consumo de productos y alimentos propios de cada

región y garantizará a las personas, el acceso permanente a alimentos sanos,

variados, nutritivos, inocuos y suficientes.” (Ley Orgánica de la Salud, 2017).

La norma técnica ecuatoriana NTE INEN 2789:2013 es una adaptación

modificada de la Norma Internacional CODEX STAN 184-1993 y no proporciona

información de análisis para la determinación de metales pesados en el fruto, así

como tampoco se encuentran valores nutricionales de referencia brinden

información de su composición nutricional.

Según la Unión Europea en el Reglamento (CE) N0 1881 existen límites

permisibles de metales pesados que se detallan a continuación:

Tabla VIII: Límites CE

Metal Contenido máximo

Plomo 0.10 mg/Kg (ppm) Mercurio 0.01 ppm

Cadmio 0.05 mg/Kg (ppm) Fuente: (Commision Regulation(CE), 2016)

En tanto el CODEX ALIMENTARIUS establece los siguientes límites

máximos:

Tabla IX: Límites AOAC

Metal Contenido máximo

Plomo 0.10 mg/Kg Mercurio ------

Cadmio 0.05 mg/Kg Fuente: (CODEX ALIMENTARIUS, 2015)

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CAPÌTULO III

METODOLOGÍA DE LA INVESTIGACIÓN

3.1. Tipo de investigación

La presente investigación es de tipo experimental, acerca de la

determinación de metales pesados y componentes del valor nutricional en

Mangifera indica L., en el fruto de mango que han sido recolectados en la Facultad

de Ciencias Químicas perteneciente a la Universidad de Guayaquil.

3.2. Lugar de Investigación

Facultad de Ciencias Químicas de la Universidad de Guayaquil, ubicada en

la ciudadela universitaria Salvador Allende.

3.3. Lugar de Análisis

Laboratorio Químico Microbiológico “JOZALAB”. Acreditación SAE LE 15-

012.

3.4. Muestra

Se recolectó 1 kilo de cada variedad de mango, Mango reina y Mango

Manzana, para realizar las determinaciones nutricionales y de metales pesados

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3.5. Materiales, Reactivos y Equipos

3.5.1. Materiales

Tabla X: Materiales

Materiales Matraces aforados Beakers Pipetas volumétricas Embudos Tubos de ensayo Espátulas Probetas graduadas Crisoles de porcelana Fundas ziploc Embudo de decantación

Fuente: Barragán & Carrera, 2019

3.5.2. Equipos

A continuación se enlistan los equipos utilizados en los diferentes análisis

Tabla XI: Equipos

Análisis Equipo

Determinación de metales pesados Espectrómetro de absorción atómica

Medidor de corriente

Mufla

Determinación de valor nutricional Espectrofotómetro

Equipo Kjeldahl

Centrífuga

Fuente: Barragán & Carrera, 2019

3.5.3. Reactivos

En la tabla 12 enlistamos los reactivos utilizados para cada una de las

determinaciones que se realizarán

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Tabla XII: Reactivos

Ácido sulfúrico

Óxido de mercurio o mercurio metálico

Sulfato de potasio

Ácido salicílico

Proteínas

Solución de tiosulfato

Hidróxido de sodio

Determinación Gránulos de zinc

Polvo de zinc de valor

Ácido clorhídrico (solución estándar) nutricional

Hidróxido de sodio (solución estándar)

Ácido sulfúrico n-Hexano

Grasa

Metil ter-butil éter

Sulfato de sodio

Mezcla de disolventes: 80% n-hexane/ 20% MTBE, v/v

Solución stock de plomo

Solución de trabajo de plomo

Ácido nítrico

Hidróxido de amonio

Plomo Solución reductora de citrato-cianuro

Solución stock de ditizona

Solución de trabajo de ditizona

Solución de sulfito de sodio

Solución de iodo

Ácido clorhídrico

Ácido nítrico

Determinación Nitrato de magnesio

Nitrato de níquel de metales Cadmio

Ácido fosfórico pesados

Nitrato de paladio

Ácido cítrico

Solución stock de cadmio

Solución stock de mercurio

Solución estándar de mercurio

Ácido nítrico

Solución de permanganato de potasio

Mercurio Solución persulfato de potasio

Solución de cloruro de sodio-sulfato de hidroxilamina

Solución de ión estañoso

Ácido sulfúrico Fuente: Barragán & Carrera, 2019

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3.6. Muestreo

3.6.1. Recolección de muestras

Se cosecharon mangos en la facultad de Ciencias Químicas directamente

de los árboles ubicados en la entrada de la mencionada institución, tomando

precauciones de no dañar las muestras con particiones y magulladuras. Se

recolectó aproximadamente 1 kilo de cada variedad a analizar.

Área de recolección Área de recolección

de muestra de muestra

(Mango Manzana) (Mango Reina)

Ilustración 9. Plano de la entrada de la Facultad de Ciencias Químicas

Fuente: departamento Técnico de Obras Universitarias

3.6.2. Tipo de envase

Las frutas recolectadas se guardaron en fundas plásticas con cierre

hermético

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3.6.3. Requerimientos básicos de información

Se rotuló con información básica cada funda:

Nombre de la variedad

Peso aproximado

Lugar de recolección

Fecha de recolección

3.7. Determinación de Valor Nutricional

3.7.1. Proteína: Método AOAC 995.04 Nitrógeno Total en Fertilizantes.

Método Kjedahl

a) Coloque la porción de muestra pesada (0.7–2.2 g) en el matraz de

digestión. Añadir 40 mL de ácido sulfúrico y 2 g de ácido salicílico.

b) Agitar hasta que esté completamente mezclado y dejar reposar, con

agitación ocasional, aproximadamente 30 minutos c) Añadir 5g de Na2S2O3⋅5H2O ó 2 g de polvo de Zn

d) Agitar y dejar reposar 5 min. Calentar hasta que cese la espuma y agregar

0.7 g de HgO (o 0.65 g de Hg metálico) y 15 g de K2SO4 en polvo

e) Hervir hasta que la solución se aclare, aproximadamente 30 minutos más (2

h para muestras de prueba que contienen material orgánico).

f) Enfriar a temperatura <25 ° C y agregar 200mL de agua

g) Agregar 25 ml de la solución de sulfuro o tiosulfato, y mezcle para precipitar

Hg. Agregar gránulos de Zn para prevenir la formación de precipitado,

incline el matraz y agregue una lenteja de NaOH sin agitar.

h) La solución de tiosulfato o sulfuro se puede mezclar con la solución de

NaOH antes de la adición al matraz.

i) Conectar de inmediato al bulbo de destilación en el condensador

j) Colocar de 5 a 7 indicador de gotas en el receptor, gire el matraz para

mezclar bien los contenidos

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k) Calentar hasta que todo NH3 se haya destilado (≥ 150 ml de destilado).

l) Retirar el receptor, lavar la punta del condensador y valorar el exceso de

ácido estándar en destilado con solución estándar de NaOH. (AOAC, 2016)

3.7.2. Grasa: Método SM 5520 Aceite y grasa

a) Determinar el volumen de la muestra.

b) Si la muestra no se ha acidificado previamente, acidifique con 1: 1 HCl o 1:

1 H2SO4 a pH 2 o inferior (generalmente, 5 ml es suficiente para 1L de

muestra).

c) Transfiera la muestra a un embudo de separación. Enjuague

cuidadosamente el frasco de muestra con 30 ml de disolvente de extracción

(n-hexano) y agregue los lavados con solventes al embudo de decantación.

Agitar vigorosamente durante 2 min. Dejar las capas separadas.

d) Drenar la capa acuosa y una pequeña cantidad de capa orgánica en el

contenedor de muestra original.

e) Escurrir la capa de solvente a través de un embudo que contiene un papel

de filtro y 10 g de Na2SO4, ambos enjuagados con solvente, en un matraz

de destilación limpio y. Si no se puede obtener una capa de solvente

transparente y existe una emulsión de más de aproximadamente 5 ml,

drene las capas de emulsión y solvente en un tubo de centrífuga de vidrio y

centrifugue durante 5 min a aproximadamente 2400 rpm.

f) Transferir el material centrifugado a un embudo de decantación apropiado y

drene la capa de solvente a través de un embudo con un papel de filtro y 10

g de Na2SO4, ambos de los cuales se han preparado previamente, en un

matraz de destilación limpio y tarado.

g) Recombinar las capas acuosas y cualquier emulsión o sólidos restantes en

el embudo de separación. Para muestras con <5 ml de emulsión, drene solo

el solvente transparente a través de un embudo con papel de filtro

prehumedecido y 10 g de Na2SO4.

h) Recombinar las capas acuosas y cualquier emulsión o sólidos restantes en

el embudo de separación.

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i) Extraer dos veces más con 30 ml de solvente cada vez, pero primero

enjuagar el recipiente de la muestra con cada porción de solvente. Repetir

el paso de centrifugación si la emulsión persiste en los siguientes pasos de

extracción.

j) Combinar los extractos en un matraz de destilación tarado e incluya en el

matraz un enjuague final del filtro y Na2SO4 con un disolvente adicional de

10 a 20 ml.

k) Destilar el disolvente del matraz en un baño de agua a 85 ° C para

cualquier sistema de disolvente. Para maximizar la recuperación del

disolvente, coloque el matraz de destilación con un adaptador de destilación

equipado con una punta de goteo y recoja el disolvente en un receptor

enfriado en un baño de hielo. Cuando se detenga la condensación de

disolvente visible, retire el matraz del baño de agua. Cubra el baño de agua

y seque los matraces en la parte superior de la cubierta, con el baño de

agua todavía a 85 ° C, durante 15 min. Extraer aire a través del matraz con

un vacío aplicado durante los últimos 1 min.

l) Enfriar en un desecador durante al menos 30 minutos y pesar.

m) Para determinar el volumen de muestra inicial, llene la botella de muestra

para marcar con agua y luego vierta agua en un cilindro graduado de 1L, o

pesar el recipiente vacío y la tapa y calcular el volumen de la muestra por

diferencia del peso inicial (suponiendo una densidad de muestra de 1,00).

(Association & al, 2012)

3.7.3. Cenizas: Método AOAC 942.05 Cenizas de alimentación animal

a) Pesar 2 g de la muestra en un crisol de porcelana y colocar en horno

precalentado a temperatura 600 ° C.

b) Mantener a esta temperatura 2 h.

c) Transferir el crisol directamente al desecador, enfriar y pesar

inmediatamente, reportar el porcentaje de ceniza al primer decimal. (AOAC,

2016)

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3.7.4. Carbohidratos: Método ICUMSA

a) Pesar un tamaño apropiado de muestra para preparar una solución final

con un 0,5% de azúcar invertido peso ≥5 g, en 250 ml de matraz

volumétrico o Kohlrausch.

b) Agregar 150 ml de agua en forma de remolino para humedecer y mezcle, y

caliente solo a punto de ebullición.

c) Dejar que se enfríe, diluya al volumen, mezcle y deje reposar para asentar

las partículas gruesas.

d) Transferir 50 ml de sobrenadante a un matraz volumétrico de 100 ml y

agregue 2.5 ml de HCl (gravedad específica 1.18 a 20/4 ° C).

e) Dejar reposar durante la noche a ≥25 ° C, diluir al volumen y mezclar. (Si la

alícuota que se usará en la determinación es> 25 ml, es necesario

neutralizar la solución invertida).

f) Llenar la bureta con solución de prueba invertida. Coloque la solución de

azúcar en el matraz, colóquela en el calentador, agregue la solución de

prueba a 2 ml de la titulación final (determinada por el ensayo), ponga a

hervir, hierva durante 2 minutos y complete la titulación con la modificación

Soxhlet de la solución de Fehling. (Icumsa, 2017)

3.8. Determinación de metales pesados

Digestión de la muestra: Sistema de digestión asistido por microondas

a) Para digerir la muestra vegetal seca y finamente pulverizada se utilizó un

sistema de digestión de presión asistida por microondas, pesando con

precisión, aproximadamente 1,0 g de muestra, y colocándola en los

recipientes de digestión.

b) Se añadieron 20 ml de agua regia, se cerraron herméticamente los reactores y

se calentaron a 200 ºC en el sistema de microondas durante 20 minutos.

c) Después de enfriar, las muestras se filtraron a través de papel de filtro para

eliminar cualquier material sólido residual. El filtrado se recogió en matraces

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volumétricos de 100 ml, se diluyó con agua desionizada y se analizó

mediante la técnica AAS.

3.8.1. Plomo: SM-3500-Pb-B

a) A una muestra digerida que contenga no más de 1 ml ácido concentrado

añada 20 ml HNO3

b) Filtrar a través del papel de filtro sin plomo # (110) directamente en un

embudo de separación de 250 ml.

c) Enjuagar el vaso de digestión con 50 ml de agua y agregue al filtro.

d) Agregar 50 ml de solución de citrato-cianuro amoniacal, mezcle y enfríe a

temperatura ambiente.

e) Agregar 10 ml de solución de trabajo de ditizona, agite vigorosamente el

embudo taponado durante 30 segundos y deje que las capas se separen.

Insertar el algodón sin plomo en el vástago del embudo de separación y

extraer la capa inferior.

f) Desechar de 1 a 2 ml de capa de CHCl3, luego llene la celda de absorción.

g) Medir la absorbancia del extracto a 510 nm, usando una solución de trabajo

de ditizona, a espectrofotómetro cero. (Association & al, 2012)

3.8.2. Mercurio: Método APHA 3500-HG

3.8.2.1. Operación del instrumento

a) Establezca la longitud de onda a 253.7 nm. Instale la celda de absorción y

alinee la trayectoria de la luz para obtener la máxima transmisión. Conecte

el equipo asociado a la celda de absorción con tubos de plástico de vidrio o

vinilo

b) Encienda el aire y ajuste el caudal a 2 L/ min. Permita que el aire fluya

continuamente. Alternativamente, siga las instrucciones de operación del

fabricante. NOTA: La iluminación fluorescente puede aumentar el ruido de

la línea de base.

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3.8.2.2. Estandarización

a) Transfiera 100 mL de cada una de las soluciones estándar de 1.0, 2.0 y 5.0

μg /L Hg y un blanco de 100 mL de agua a matraces de reacción

Erlenmeyer de 250 mL. Agregue 5 ml de H2SO4 concentrado y 2,5 ml de

HNO3 concentrado a cada matraz. Agregue 15 ml de solución de KMnO4 a

cada matraz y deje reposar al menos 15 minutos. Añadir 8 ml de solución

de K2S2O8 a cada matraz y calentar durante 2 h en un baño de agua a 95 °

C. Enfriar a temperatura ambiente.

b) Tratando cada matraz individualmente, agregue suficiente solución de

NaCl-hidroxilamina para reducir el exceso de KMnO4, luego agregue 5 ml

de solución de SnCl2 o SnSO4 e inmediatamente coloque el matraz en el

aparato de aireación. A medida que el Hg se volatiliza y se transporta a la

celda de absorción, la absorbancia aumentará a un máximo en unos pocos

segundos. Tan pronto como el registrador vuelva aproximadamente a la

línea de base, retire el tapón que sostiene la frita del matraz de reacción y

reemplácelo con un matraz que contenga agua.

c) Enjuague el sistema durante unos segundos y ejecute el siguiente estándar

de la misma manera. Construya una curva estándar trazando la altura del

pico frente a los microgramos Hg.

Análisis de muestras

a) Transfiera 100 ml de muestra o porción diluida a 100 ml que contenga no

más de 5.0 μg Hg / L a un matraz de reacción. Elimine todo el cloro libre

antes de que se reduzca el Hg y se introduzca en la célula utilizando un

exceso (25 ml) de reactivo de hidroxilamina.

b) Elimine el cloro libre rociando la muestra suavemente con aire o nitrógeno

después de agregar una solución reductora de hidroxilamina. Use un tubo

para evitar el arrastre de cloruro de estaño residual, que podría causar la

reducción y pérdida de mercurio. (Association & al, 2012)

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3.8.3. Cadmio: Método SM 3500-Cd

3.8.3.1. Pretratamiento de la muestra

a) Antes del análisis, pretrate todas las muestras como se indica a

continuación. Enjuague toda la cristalería con HNO3 y agua. Lleve a cabo

los procedimientos de digestión en un área de laboratorio limpia y sin polvo

para evitar la contaminación de la muestra. Para la digestión de trazas de

aluminio, use utensilios de polipropileno o TFE para evitar el aluminio

lixiviable de la cristalería.

b) Transfiera cuantitativamente la muestra digerida a un matraz aforado de

100 ml, agregue una cantidad apropiada de modificador de matriz y diluya

al volumen con agua.

3.8.3.2. Operación del instrumento

a) Monte y alinee el dispositivo del horno de acuerdo con las instrucciones del

fabricante. Encienda el instrumento y el sistema de recolección de datos.

Seleccione la fuente de luz apropiada y ajústela a la configuración eléctrica

recomendada. Seleccione la longitud de onda adecuada y configure todas

las condiciones de acuerdo con las instrucciones del fabricante, incluida la

corrección de fondo. La corrección de fondo es importante cuando los

elementos se determinan en longitudes de onda cortas o cuando la muestra

tiene un alto nivel de sólidos disueltos. La corrección de fondo normalmente

no es necesaria en longitudes de onda superiores a 350 nm. Si se necesita

una corrección de fondo superior a 350 nm, la corrección de fondo del arco

de deuterio no es útil y se deben usar otros tipos.

b) Seleccione el flujo de gas inerte o de vaina adecuado. En algunos casos, es

deseable interrumpir el flujo de gas inerte durante la atomización. Dicha

interrupción produce un aumento de la sensibilidad al aumentar el tiempo

de residencia del vapor atómico en la trayectoria óptica. La interrupción del

gas también aumenta la absorción de fondo e intensifica los efectos de

interferencia, pero los métodos modernos de corrección de fondo

generalmente eliminan estos problemas. Considere las ventajas y

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desventajas de esta opción para cada matriz al optimizar las condiciones

analíticas.

c) Para optimizar las condiciones del horno de grafito, ajuste cuidadosamente

las configuraciones de temperatura del horno para maximizar la sensibilidad

y la precisión y minimizar las interferencias. Siga las instrucciones del

fabricante.

d) Use temperaturas de secado ligeramente por encima del punto de ebullición

del solvente y proporcione tiempo y temperatura suficientes para una

evaporación completa sin hervir ni salpicar.

e) Seleccione la temperatura de atomización determinando la temperatura

más baja que proporciona la máxima sensibilidad sin erosionar

significativamente la precisión. Optimice mediante una serie de

determinaciones sucesivas a varias temperaturas de atomización utilizando

una solución estándar que proporciona una absorbancia de 0.2 a 0.5.

f) La temperatura de carbonización debe ser lo suficientemente alta para

maximizar la volatilización de los componentes de la matriz interferente,

pero demasiado baja para volatilizar el elemento de interés. Con las

temperaturas de secado y atomización ajustadas a sus valores óptimos,

analice una solución estándar a una serie de temperaturas de

carbonización en incrementos crecientes de 50 a 100 ° C. Cuando se

excede la temperatura óptima de carbonización, habrá una caída

significativa en la sensibilidad. Grabe la temperatura de carbonización

frente a la absorbancia de la muestra: la temperatura óptima de

carbonización es la temperatura más alta sin sensibilidad reducida.

Verifique la optimización con cambios importantes en la matriz de muestra

3.8.3.3. Análisis de muestras

Analice todas las muestras, excepto aquellas que demuestren estar libres

de interferencias de matriz (basadas en recuperaciones del 85% al 115% para

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adiciones conocidas) utilizando el método de adiciones estándar. Analice todas las

muestras al menos por duplicado o hasta que se obtengan resultados

reproducibles. Una variación de ≤ 10% se considera reproducibilidad aceptable.

Determinación directa

Inyecte una porción medida de muestra pretratada en el horno de grafito.

Use el mismo volumen que se usó para preparar la curva de calibración. Por lo

general, agregue un modificador inmediatamente después de la muestra,

preferiblemente usando un muestreador automático o una micropipeta. Algunos

métodos requieren que el modificador se inyecte antes de la muestra. Use el

mismo volumen y concentración de modificador para todos los estándares y

muestras. Secar y atomizar de acuerdo con el programa preestablecido. Repetir

hasta obtener resultados reproducibles.

Compare el valor de absorbancia promedio o el área del pico con la curva

de calibración para determinar la concentración del elemento de interés.

Alternativamente, lea los resultados directamente si el instrumento está equipado

con esta capacidad. Si la absorbancia (o concentración) o el área del pico de la

muestra es mayor que la absorbancia (concentración) o el área del pico de la

solución estándar más concentrada, diluya la muestra y vuelva a analizar. Si se

requieren diluciones muy grandes, otra técnica (por ejemplo, llama AA o ICP)

puede ser más adecuada para esta muestra. Los grandes factores de dilución

magnifican pequeños errores en el cálculo final. Mantenga el fondo ácido y la

concentración de modificador de matriz (si está presente en las soluciones)

constante. Diluir la muestra en una solución en blanco de modificadores de ácido y

matriz. (Association & al, 2012)

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CAPÌTULO IV

RESULTADOS Y DISCUSIÓN

Para la determinación de valor nutricional utilizaremos como referencia los

valores establecidos por Stafford, expresados en porcentajes por cada 100g de

muestra, para cada parámetro realizado

Para los datos que se obtuvieron de los análisis realizados a las muestras

de Mango Reina y Mango Manzana se tomó como referencia los límites

establecidos en el CODEX ALIMENTARIUS y en el Reglamento de la Unión

Europea para metales pesados

También se realizó la determinación de valor nutricional de cada una de las

muestras utilizando métodos estandarizados como lo son AOAC y SM.

4.1. Resultados

4.1.1. Determinación Valor Nutricional

Tabla XIII: Valor nutricional en Mango Reina

Mango Reina Lugar de cosecha: Entrada de Facultad de Ciencias Químicas

Temperatura: 24.50C Humedad: 37%

Parámetro Método Resultado Unidad

Proteína AOAC 995.04 0.75 % Grasa SM 5520 0.06 %

Cenizas AOAC 942.05 0.2 % Carbohidratos ICUMSA 6.9 %

Fuente: Barragán & Carrera, 2019

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Tabla XIV: Valor nutricional en Mango Manzana

Mango Manzana Lugar de cosecha: Entrada de Facultad de Ciencias Químicas

Temperatura: 24.50C Humedad: 37%

Parámetro Método Resultado Unidad

Proteína AOAC 995.04 0.82 %

Grasa SM 5520 0.05 %

Cenizas AOAC 942.05 0.15 % Carbohidratos ICUMSA 7.1 %

Fuente: Barragán & Carrera, 2019

4.1.2. Determinación de metales pesados

Tabla XV: Metales pesados en Mango Reina

Mango Reina Lugar de cosecha: Entrada de Facultad de Ciencias Químicas

Temperatura: 24.50C Humedad: 37%

Parámetro Método Resultado Unidad

Plomo SM 3500 Pb-B ND ppm

Mercurio APHA 3500 HG ND ppm Cadmio SM 3500 Cd 0.001 ppm

Fuente: Barragán & Carrera, 2019

Tabla XVI: Metales pesados en Mango Manzana

Mango Manzana Lugar de cosecha: Entrada de Facultad de Ciencias Químicas

Temperatura: 24.50C Humedad: 37%

Parámetro Método Resultado Unidad

Plomo SM 3500 Pb-B ND ppm

Mercurio APHA 3500 HG ND ppm

Cadmio SM 3500 Cd 0.003 ppm

Fuente: Barragán & Carrera, 2019

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4.2. Discusión

4.2.1. Determinación de Valor Nutricional

En los ensayos de valor nutricional podemos identificar que los porcentajes

encontrados varían dependiendo de la especie de mango analizada, los cuales

podemos resumir en los siguientes gráficos:

Gráfico 1. Porcentajes obtenidos en el Mango Reina

Valor Nutricional Mango Reina

Grasa 0,06% Proteína Cenizas; 0,2%

0,75%

Proteína

Grasa

Carbohidratos 6,9%

Cenizas

Carbohidratos

Fuente: Barragán & Carrera, 2019

De acuerdo a los análisis realizados a esta variedad de mango podemos

deducir que el mayor componente de esta fruta son los carbohidratos que los

hayamos en un porcentaje de 6.9%, aunque dicho porcentaje se encuentra por debajo

del contenido de carbohidratos 16.8% establecido por Stafford, el porcentaje obtenido

de 0.06% del contenido de grasas también se encuentra debajo del

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establecido en 0.4%, el contenido de cenizas reportó 0.2% también por debajo del

valor establecido en 0.39%.

El valor para el porcentaje de proteína se encuentra establecido en 0.7% y

se obtuvo 0.75% que nos indica que se encuentra dentro de los parámetros.

Gráfico 2. Porcentajes obtenidos en el Mango Manzana

Valor Nutricional Mango Manzana

Grasa 0,05%

Cenizas 0,15% Proteína 0,82%

Proteína

Grasa

Carbohidratos

Cenizas

7,10%

Carbohidratos

Fuente: Barragán & Carrera, 2019

Los análisis realizados al Mango Manzana nos indican que encontramos

carbohidratos en un porcentaje de 7.1%, que se encuentra por debajo del

parámetro establecido por Stafford 16.8%, el porcentaje obtenido de 0.05% en

grasas se encuentra por debajo del establecido en 0.4%, el contenido de cenizas

de 0.15% está debajo del valor establecido en 0.39%.

El porcentaje 0.82% obtenido para proteína está por encima del valor

establecido por Stafford en 0.7%.

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4.2.2. Determinación de metales pesados

Gráfico 3. Determinación de Plomo en Mango

Determinación de Plomo

0,12

0,1 mg/Kg 0,1 mg/Kg

0,1

0,08

0,06

0,04

0,02 0 0

0

Mango Reina Mango Manzana Límite AOAC Límite CE

Determinación de Plomo

Fuente: Barragán & Carrera, 2019

Gráfico 4. Determinación de Cadmio en Mango

Determinación de Cadmio

0,06

0,05 mg/Kg 0,05 mg/Kg

0,05

0,04

0,03

0,02

0,01 0,003

0,001

0

Mango Reina Mango Manzana Límite AOAC Límite CE

Determinación de Cadmio

Fuente: Barragán & Carrera, 2019

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Gráfico 5. Determinación de Mercurio en Mango

Determinación de Mercurio

0,012

0,01 mg/Kg

0,01

0,008

0,006

0,004

0,002

0 0 0

Mango Reina Mango Manzana Límite CE

Determinación de Mercurio

Fuente: Barragán & Carrera, 2019

En los análisis correspondientes a los metales pesados plomo y mercurio

no se detectó presencia de dichos metales. En el metal Cadmio se obtuvo

resultados de 0.001mg/Kg para mango Reina y 0.003mg/Kg para mango

Manzana, pero estos valores se encuentran por debajo de los límites de la AOAC

y CE con un valor de 0.05mg/Kg establecido para ambos casos.

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CONCLUSIONES

Según los resultados obtenidos en la determinación de valor nutricional y

determinación de metales pesados se concluye que los mangos cosechados en la

Facultad de Ciencias Químicas perteneciente a la Universidad de Guayaquil no

representan un aporte significativo para la dieta de las personas que consumen

este producto.

En la determinación de valor nutricional en los mangos conocidos como

Reina y Manzana obtuvimos los siguientes resultados:

Reina: Proteína 0.75%; Grasa 0.06%; Cenizas 0.2%; Carbohidratos6.9%

Manzana: Proteína 0.82%; Grasa 0.05%; Cenizas 0.15%; Carbohidratos 7.1%

Estos resultados se encuentran por debajo de los parámetros porcentuales

de composición nutricional establecidos por Stafford y que han sido adoptados por

la FAO.

Los análisis de determinación de metales pesados para los casos de plomo y

cadmio se realizaron por métodos Standard Methods SM y en el caso de mercurio se

realizó por método APHA, estos métodos involucraron la espectrometrometría de

absorción atómica (AAS) para obtener los siguientes resultados:

Mango Reina: Plomo ND; Mercurio ND; Cadmio 0.001ppm

Mango Manzana: Plomo ND; Mercurio ND; Cadmio 0.003ppm

Los datos obtenidos descartan una contaminación crítica de los frutos con

estos metales pesados, pero es aconsejable no consumirlos debido a que la

ingesta cotidiana de estos mangos podría ocasionar una acumulación en el

organismo que puede desencadenar intoxicaciones agudas o crónicas.

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RECOMENDACIONES

Se debe tomar en cuenta la calidad del suelo y del agua de riego en

la que se realizarán plantaciones futuras para evitar la contaminación

de los frutos con metales pesados.

Es importante el uso de fertilizantes enriquecidos, que se encuentren

dentro de la lista de permitidos, para enriquecer el suelo en el cual se

encuentra plantados los árboles de mango y poder cosechar frutos

con las necesidades nutricionales básicas implicadas en la dieta de

los consumidores.

Se recomienda que la Facultad de Ciencias Químicas realice un

control a los alimentos que son cosechados en la misma para

garantizar la inocuidad del alimento.

A nivel nacional, se recomienda que el Servicio Ecuatoriana de

Normalización INEN presente un proyecto que involucre parámetros

nutricionales y límites tolerables enfocados al mango ecuatoriano y

sus variedades.

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ANEXOS

Cosecha de mangos en la Facultad de Ciencias Químicas

Cosecha de mangos en la Facultad de Ciencias Químicas

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Muestra de Mango Manzana

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Muestra de Mango Reina

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Frutos en el árbol Mangifera indica L.

Frutos en el árbol Mangifera indica L.

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Árbol de mango variedad Reina ubicado en la entrada de la facultad

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Árbol de mango variedad Manzana ubicado en la entrada de la facultad

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Resultados de análisis

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Límites según Códex Alimentarius

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Límites según Unión Europea

Plomo

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Cadmio

Mercurio

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