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UNIVERSIDAD NACIONAL DE TRUJILLO

FACULTAD DE CIENCIAS BIOLÓGICAS

ESCUELA ACADÉMICO PROFESIONAL DE CIENCIAS BIOLÓGICAS

“Efecto del Ácido Indol Butírico en el enraizamiento de

estacas de Cucurbita moschata Duchesne en condiciones de

invernadero”

TESIS PARA OPTAR EL TÍTULO DE

BIÓLOGO

Autores : Br. MILAGROS ELIZABETH RUIZ ARIAS

Asesora : Dra. MERCEDES CHAMAN MEDINA

TRUJILLO-PERÚ

2014

Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo

Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis.

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AUTORIDADES DE LA UNIVERSIDAD NACIONAL DE

TRUJILLO

Dr. ORLANDO VELÁSQUEZ BENITES

RECTOR

Dra. VILMA JULIA MÉNDEZ GIL

VICE-RECTOR ACADÉMICO

Dra. FLOR MARLENE LUNA VICTORIA MORI

VICE-RECTOR ADMINISTRATIVO

Dr. ALBERTO SANTIAGO UCEDA DUCLOS

SECRETARIO GENERAL



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AUTORIDADES DE LA FACULTAD DE CIENCIAS BIOLÓGICAS

Dr. JOSÉ MOSTACERO LEÓN

DECANO DE LA FACULTAD DE CIENCIAS BIOLÓGICAS

Dr. WILIAM ZELADA STRAVER

SECRETARIO DE LA FACULTAD DE CIENCIAS BIOLÓGICAS

Dr. FREDY PELAEZ PELAEZ

DIRECTOR DE LA ESCUELA ACADÉMICO PROFESIONAL DE CIENCIAS

BIOLÓGICAS



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PRESENTACIÓN

Señores miembros del jurado:

En cumplimiento con las disposiciones establecidas en el reglamento de Grados y

Títulos de la Escuela Académico Profesional de Ciencias Biológicas, Facultad de

Ciencias Biológicas de la Universidad Nacional de Trujillo; someto a vuestra

consideración y criterio la presente tesis, titulado: “Efecto del Ácido Indol Butírico en el

Enraizamiento estacas de Cucurbita moschata Duchesne en condiciones de

invernadero”, con el propósito de obtener el título de profesional de Biólogo.

Esperando que vuestro criterio sea de comprensión por algunos errores y omisiones

en su elaboración, me someto a su dictamen.

Trujillo, 26 Junio 2014

_______________________________________

Milagros Elizabeth Ruiz Arias.

BACHILLER EN CIENCIAS BIOLÓGICAS



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MIEMBROS DEL JURADO

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Dr. Elmer Alvites Izquierdo

PRESIDENTE

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Dr. Roger Veneros Terrones

SECRETARIO

______________________________

Dra. Mercedes Chaman Medina

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DEL ASESOR

El que suscribe, el profesor asesor de la presente tesis, declara que ha sido ejecutada de

conformidad con su correspondiente proyecto y con las orientaciones brindadas a la

tesista.

Respecto al informe; ha sido revisado, acogiendo las observaciones y sugerencias

pertinentes.

____________________________________________


ASESORA



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DE LA APROBACIÓN

Los profesores que suscriben, miembros del jurado dictaminador, declaran que la

presente tesis ha cumplido con los requisitos formales y fundamentales, siendo

aprobado por UNANIMIDAD.

_______________________________

Dr. Elmer Alvites Izquierdo

PRESIDENTE

_______________________________

Dr. Roger Veneros Terrones

SECRETARIO

______________________________


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DEDICATORIA

A Dios, por permitirme culminar esta etapa,

por mostrarme la luz en los momentos de

dificultad, sin desampararme y estar siempre a

mi lado; Deseo que este sea el comienzo de un

largo camino que pueda recorrer con éxito,

siempre bajo su amparo.

A mis padre, Alfonso Ruiz G. y a mi madre,

Vitelia Arias V. que con mucho esfuerzo y

dedicación me sacaron adelante, con sus buenos

ejemplos de fortaleza y perseverancia hicieron

que siga en este camino de lucha y de sueños,

porque trabajaron sin importarles el cansancio

para un triunfo mío.

A mis hermanos y sobrinos que con sus

buenas vibras y alegrías hicieron que

pueda avanzar en el camino trazado.



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AGRADECIMIENTOS

A Dios por ser mi fe y mi fortaleza en los momentos más difíciles de mi vida, dándome

siempre las razones y las situaciones necesarias para seguir.

A mis padres, por acompañarme en cada uno de mis pasos, brindándome siempre sus

consejos y comprensión en todas mis decisiones y la motivación para seguir adelante; a

mis hermanos por apoyarme con sus enseñanzas durante mi aprendizaje, inculcándome

la responsabilidad como estudiante.

A la Universidad Nacional de Trujillo, por acogerme en sus aulas durante todos estos

años de estudio.

A mi asesora, la Dra. Mercedes Chaman, por haber creído en mí, por sus enseñanzas en

lo académico y por su disposición para dirigirme durante el presente trabajo de tesis.

A todos los amigos cercanos y compañeros de estudio, en especial a Linda Vásquez

Valverde por brindarme su apoyo durante la ejecución de este proyecto.

A la empresa Best Berries Perú S.A.C y al Ing. Máximo Jiménez Terrones por el apoyo

incondicional.



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ÍNDICE

AUTORIDADES DE LA UNIVERSIDAD NACIONAL DE TRUJILLO ii

AUTORIDADES DE LA FACULTAD DE CIENCIAS BIOLÓGICAS iii

PRESENTACIÓN iv

MIEMBROS DEL JURADO v

DEL ASESOR vi

DE LA APROBACIÓN vii

DEDICATORIA viii

AGRADECIMIENTO ix

INDICE x

RESUMEN xi

ABSTRACT xii

I. INTRODUCCIÓN 1

II. MATERIAL Y MÉTODOS 7

III. RESULTADOS 10

IV. DISCUSIÓN 18

V. CONCLUSIONES 23

VI. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS 24

ANEXOS 31



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RESUMEN

Entre los factores más limitantes en la producción de C. moschata Duchesne se

encuentra la carencia de semilla botánica, por lo que actualmente existe interés en

promover estudios tendientes a buscar otras técnicas de multiplicación. Una práctica

muy utilizada, es el enraizamiento por medio de estacas de tallo. El presente trabajo

tuvo como objetivo determinar el efecto de diferentes concentraciones de ácido

inbolbutírico sobre el enraizamiento de estacas de Cucurbita moschata Duchesne en

condiciones de invernadero. Las estacas tanto basales como apicales fueron sembradas y

tratadas con 0, 200, 400 y 600 ppm de IBA durante 30 días. Se encontró que tanto EA y

EB enraizaron al 100 % obteniendo 2 raíces por estaca; las EB tratadas con 400 ppm de

IBA fueron las que presentaron mayor LR principal, NRS y LP. Los resultados indican

que las plantas expuestas a 400 ppm de IBA incrementan el crecimiento con respecto a

longitud de raíces y planta así como el número de raíces.



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ABSTRACT

Among the most limiting in the production of C. moschata Duchesne factors is the lack

of true seed, so there is currently interest in promoting studies to search for other

amplification techniques. A widely used, practice is by rooting stem cuttings. . This

study aimed to determine the effect of different concentrations of inbolbutírico acid on

rooting of Cucurbita moschata Duchesne under greenhouse conditions. Such as the

apical basal cuttings were planted and treated with 0, 200, 400 and 600 ppm IBA for 30

days. We found that both EA and EB rooted 100% winning 2 roots per cutting, basal

cuttings treated with IBA 400 ppm were the principal had higher LR, NRS and LP. The

results indicate that plants exposed to 400 ppm of IBA incementtan growth regarding

length plant roots and also the number of roots.



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I. INTRODUCCIÓN

Cucurbita moschata Duchesne “loche” pertenece a la familia de las Cucurbitáceas,

presenta tallos largos que llegan hasta 10 m. de longitud, cada uno de ellos emite de tres

a diez ramas basales, separadas por entrenudos cortos; mientras que su sistema radical

está constituido por una raíz principal y numerosas raíces secundarias, algunas de estas

muy gruesas, leñosas y con gran cantidad de raíces menores absorbentes (León, 2000).

Sus frutos inmaduros y maduros, han servido de alimento desde épocas remotas

(León, 1987; Lira, 1995); en algunos países como Zambia, Malawi, la India, algunas

zonas de África Tropical y en muchas regiones de Latinoamérica, es consumida como

verdura (Gwanama, y col.; 2000; Hazara, y col.; 2007).

C. moschata contiene altos niveles de almidón, azúcar, proteínas, vitaminas,

carotenoides totales, de los cuales cerca del 30% corresponde a β-caroteno (provitamina

A); minerales como calcio y fósforo, y aminoácidos como tiamina y niacina, que le

confieren ciertas propiedades nutricionales y medicinales. Algunos estudios indican que

esta especie tiene efecto benéfico sobre el tratamiento de enfermedades como la

diabetes, hipertensión, ulceras gástricas, enfermedades de la vista, problemas

cardiovasculares, así como ayuda en la prevención de enfermedades de la piel y

actividad antioxidante (Vallejo y Gil, 1998; Chengrui, y col.; 1999; Alfaro, 2006).

El cultivo de esta cucurbitácea se adapta a varios tipos de suelo, desde arenosos hasta

arcillosos, tanto en suelos ácidos como básicos, y en todos los casos se debe contar con

un buen drenaje (De Gracia, y col.; 2003). El crecimiento de esta especie requiere una

temperatura óptima que varía entre los 20 y 35º C, poca presencia de lluvias y es muy

exigente en cuanto a luminosidad (IDIAP, 2003).



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En el mundo, existen cifras que indican que en el 2007 se sembraron 1’503.336 ha

de C. moschata con una producción total de 20’296.443 toneladas y rendimientos

promedios de 13.50 t/ha. En América se registra una superficie sembrada de

175.064 ha, con una producción total de 2’208.930 toneladas y rendimientos

promedios de 12.62 t/ha (FAO, 2009). En Perú, la principal zona productora de C.

moschata es el Distrito de Illimo, Provincia de Lambayeque, registrándose en el año

2007 una superficie cosechada de 18 ha con una producción estimada de 155 toneladas,

también hay reportes que se cultiva en menor escala en los Distritos de Mochumí,

Túcume y Callanca, Provincia de Lambayeque, (Peredo, 2009).

Entre los factores limitantes en la producción de C. moschata se encuentran la carencia

de semilla botánica, por lo que actualmente existe interés en promover estudios

tendientes a buscar otras técnicas de multiplicación. Una de ellas, es el enraizamiento

de estacas de tallo (Avilán, y col.; 1992), la cual es una forma de multiplicación asexual

con la que se obtienen ciertas características, como, uniformidad de las plantaciones,

debido a que no hay variabilidad genética y se acorta el periodo juvenil (Hartmann y

Kester, 2001; San Miguel, y col; 1999). No obstante, el éxito del enraizamiento de

estacas depende de una serie de factores como: edad y condición fisiológica de la planta

madre, época de recolección, tipo y condición sanitaria de las estacas, aplicación de

reguladores de crecimiento, sustrato de enraizamiento y condiciones ambientales

(temperatura y humedad) (Hartmann y Kester, 1999).

Dentro de los reguladores de crecimiento usados para garantizar un buen enraizamiento

de estacas, se utilizan particularmente las auxinas, ya que éstas promueven la iniciación

de raíces adventicias incrementando su número y calidad, uniformidad del

enraizamiento y reducción de tiempo de este proceso (Hartmann y Kester, 2001).



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También, se conoce que las auxinas estimulan la expansión y división celular,

frecuentemente fomentan el desarrollo de callos, de los cuales se desprenden las raíces

(Weaver, 1990). Se consideran como auxina natural al ácido indol acético (AIA), ácido

fenilacético, algunos cloro-indoles y al ácido indolbutírico (IBA) (Acosta, y col.; 2000).

Este último, se pensó en un principio que era sólo una auxina sintética activa, pero

luego se demostró que se encuentra naturalmente en hojas de maíz y en varias

dicotiledóneas (Salisbury y Ross, 2000).

El ácido indolbutírico, es químicamente similar al aminoácido triptófano y comúnmente

se utiliza como fitorregulador auxínico por su estabilidad, ya que es muy resistente a la

oxidación por la luz, enzimas u otros agentes (Azcón-Bieto y Talón, 2000); por difusión

llega a los diferentes órganos mediante los tejidos vasculares (xilema y floema) y

además puede ser transportado por células no vasculares como las del cambium y las

parcialmente diferenciadas asociadas al floema (Acosta, y col.; 2000). El transporte de

esta auxina en tallos y pecíolos comienza en las hojas jóvenes y sigue hacia abajo, a lo

largo de los haces vasculares (Salisbury y Ross, 2000).

Distintos estudios han demostrado que la aplicación exógena del ácido indolbutírico

(IBA), induce la formación de raíces adventicias, resultando en algunos casos, más

efectivas en la inducción rizogénica que la auxina natural (AIA) (Geneve y Hauser,

1982). Los efectos del ácido indol butírico varían en las especies propagadas

vegetativamente, tal como se ha visto en Malpighia glabra “cereza”, donde la

concentración de 2500 mg/Kg de IBA permitió el máximo porcentaje de enraizamiento

(69,57%), mientras que en Malpighia emarginata, las estacas expuestas a 7500 mg/Kg

de IBA, manifestaron el máximo enraizamiento (64,29%) (Flores, y col.; 2010). Así



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mismo, en Plukenetia volubilis L. “sacha inchi”, las estacas tratadas con 0,15 y 0,20 %

IBA generaron un alto porcentaje de enraizamiento (92,59 y 87,65%) (Ruiz y Mesén,

2010). Además, en Eucryphia glutinosa se obtuvieron mejores resultados con la

aplicación de 500 mg/L de IBA, observándose un 56,5% de enraizamiento (Latsague, y

col.; 2009). También, se reportan efectos del IBA en estacas semileñosas de

Chrysobalanus icaco L. donde el ácido indolbutírico (10000 mg/kg) tuvo efecto

positivo sobre el enraizamiento (Ramirez, 2004). De igual manera, en Berberidopsis

corallina la dosis de 1000 mg/L de IBA produjo un 90% de enraizamiento y el mayor

número de raíces se obtuvo con el tratamiento 1500 mg/L (Latsague, y col.; 2008),

mientras que, en estacas de Prosopis alba, se encontró que el testigo y la aplicación de

2,5 y 5 mg/L de IBA exhibieron altas tasas de enraizamiento respecto al tratamiento con

10 mg/L de IBA (Oberschelp, 2010).

En el caso de las cucurbitaceas se ha reportado que las especies de Cucurbita tienen una

tendencia natural a producir raíces adventicias en los nudos, o bien, estas pueden ser

inducidas (Whitaker y Davis, 1962). Al respecto, un estudio informó que estacas de C.

máxima y C. mostacha tratadas con IBA enraizaron más rápido en comparación al resto

de cucurbitáceas evaluadas (Foster, 1964). No obstante, en Cucumis melo se ha

estimulado el enraizamiento de esquejes en solución nutritiva, utilizando bajas

concentraciones de IBA (4 ppm) obteniendo un 90% de éxito en el enraizamiento y

brotación de yemas en los esquejes (Foster, 1963).

Otro factor que influye en la propagación vegetativa son las características de la estaca,

tal como se ha observado en diferentes investigaciones. Al respecto, en Myrciaria dubia

“camu camu” se evaluó el efecto del IBA sobre estacas de distintos diámetros, donde el

mejor efecto se observó en estacas de mayor diámetro sometidas a 600 ppm de IBA



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alcanzando un 80.4 % de enraizamiento (Bardales y Pinedo, 2006). Por otra parte, existe

información que indica que las estacas que producen un mejor enraizamiento son las

que provienen de material joven o nuevo, correspondientes a la periferia de la planta.

Esto se ha confirmado en Theobroma cacao “cacao” donde se obtuvo un 66,6% de

enraizamiento en estacas de madera joven (Hernández y Leal, 1997), dado que el

contenido de auxina es mayor en estos tejidos, donde se sintetiza el AIA (Acosta, y col.;

2000; Salisbury y Ross, 2000). Además, la parte de la planta de donde se obtiene la

estaca, ya sea apical o basal, también ocasiona variación en la producción de raíces; en

muchos casos, el mayor porcentaje de enraizamiento se logra con estacas procedentes

de la porción basal de la rama. En los tallos leñosos de uno o más años de edad se

acumulan carbohidratos en la base de las ramas, lo que puede conllevar a la formación

inicial de raíces, quizás bajo la influencia de sustancias promotoras de las yemas y hojas

(Hartmann y Kester, 2001; Veierskov, 1988). Así, en Plukenetia volubilis L. las

estaquillas intermedias y basales mostraron mayor enraizamiento (78,70 y 77,78 %),

(Ruiz y Mesén, 2010). En Malpighia glabra se demostró que el IBA permitió un mayor

enraizamiento (48%) y número de raíces (0.80) en estacas subapicales comparado con el

testigo (Guerrero, y col.; 2005)

En la propagación por estacas de tallo también es importante considerar la presencia de

hojas y yemas las cuales influyen en el enraizamiento de las estacas. Al respecto se

encontró que al enraizar estacas de Lomatia ferruginea, el número de raíces

aumenta significativamente con el número de yemas presente en la estaca (Awad,

1993). Sin embargo, en relación a la presencia de hojas en la estaca, se

recomienda reducir el área foliar cuando esta es muy grande, ya que así se reduce la

pérdida de humedad y se facilita su plantación (Hartmann y Kester, 1999 ).



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También se reporta que las diferencias en la producción de las raíces, se originan por la

variación en el tipo de sustrato e incluso la temperatura. Así, cuando se evaluaron cuatro

tipos de sustrato y dos niveles de hormona sobre estacas de Ficus benjamina L., el

mejor tratamiento fue el humus de lombriz más arena de río con 1000 ppm de IBA

produciendo el 92% de enraizamiento (García y Fernández, 2009). De igual manera, al

evaluar el efecto de cuatro mezclas de sustratos en estacas de Malpighia emarginata, se

encontró que el mejor sustrato fue cachaza de caña con arena de río obteniéndose 47 %

de estacas enraizadas (Guerrero, y col.; 2009). Además, se ha informado que estacas de

Cucumis melo L. y Cucumis sativa L. podrían ser enraizadas en vermiculita, con

nebulización adecuada (Mockaitis y Peterson, 1962). Se tuvo poco éxito con Cucumis

melo en perlita, pero cuando se utilizó este sustrato (sin niebla) en híbridos

interespecíficos de Cucurbita la propagación fue exitosa (Bemis, 1963). En otra

investigación se cultivaron hidropónicamente dos grupos de estacas de Vitis vinifera,

bajo dos temperaturas distintas (2 C° y temperatura ambiente) con una dosis de 2000

ppm de IBA, se obtuvo principalmente altos niveles de enraizamiento y brotación en

estacas sometidas a 2 C° (Gamoglino, 2002).

Ante estas evidencias, se pone en manifiesto que la propagación por estacas es un

método de multiplicación muy utilizado y que él IBA, favorece su enraizamiento. Por

esto, y ante la carencia de información científica sobre la propagación vegetativa de

Cucurbita moschata, con este trabajo se propuso determinar el efecto de diferentes

concentraciones de ácido inbolbutírico sobre el enraizamiento de estacas de Cucurbita

moschata Duchesne.



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II. MATERIAL Y MÉTODO

4.1 Material Biológico: Se utilizaron estacas de C. moschata, obtenidas de

ramas laterales de plantas de colectadas en campos de cultivo del Distrito de

Illimo, Provincia de Lambayeque, Departamento de Lambayeque. Las

ramas colectadas fueron trasladados al Invernadero del Jardín Botánico de la

Universidad Nacional de Trujillo, donde se procedió a la obtención de

estacas de 18 cm ± 2cm, con 3 a 5 nudos cada una, tanto del segmento

apical como del basal de cada rama; luego se eliminaron las hojas, dejando

solo una en la parte superior de cada estaca; después fueron lavadas con

agua destilada y desinfectadas con Benlate (Benomilo) para luego ser

sometidas a los diferentes tratamientos.

4.2 Tratamientos con Ácido Indol butírico: Se formaron aleatoriamente

cuatro grupos de estacas apicales (EA) y estacas basales (EB), con igual

número de estacas cada uno (tal como se muestra en el Cuadro 1) y a cada

grupo se le aplicó al azar Ácido Indol Butírico (IBA): 0, 200, 400 y 600

ppm de IBA, que se obtuvieron a partir de una solución hidroalcohólica

patrón (0.6 gr/L IBA). El tiempo de exposición de las estacas a cada

concentración de IBA fue de 3 minutos; luego fueron sembradas en sustrato

Perlita y el riego se realizó con solución Nutritiva la Molina al 50 % durante

30 días. Al cabo de este tiempo, las plantas fueron evaluadas,

determinándose: porcentaje de enraizamiento, número de raíces principales

(NR), número de raíces secundarias (NRS), longitud de raíz principal (LR) y

longitud de planta (LP).



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Cuadro 1. Se indica las concentraciones de IBA y Tipo de Estaca de C. moschata

Concentración

IBA

Tipo de Estaca

[0 ppm IBA] [200 ppm IBA] [400 ppm IBA] [600 ppm IBA]

APICAL

BASAL

4.3 Evaluación de Parámetros

4.3.1 Determinación del porcentaje de enraizamiento: En primera instancia se retiró

el sustrato con cuidado sin dañar la planta, dejando expuestas las raíces. Se procedió a

contar el número de raíces por estaca en los diferentes tratamientos y se expresó en

porcentaje de enraizamiento.

4.3.2 Determinación del Número de Raíces Secundarias: Para el número de raíces

secundarias (NRS), se fraccionó las raíces principales en segmentos proximal y distal,

con respecto a la base del tallo. El número de raíces secundarias se estimó por conteo

directo y se expresó en número de raíces secundarias por centímetro.



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4.3.3 Determinación de la Longitud: Se realizó utilizando una regla, registrando la

longitud de la raíz principal y la longitud de la planta. Ambos datos fueron expresados

en centímetros.

4.3.4 Análisis Estadístico: Los datos se analizaron con el software estadístico

Statgraphics Plus 5.1, mediante Análisis de Varianza Simple y la prueba de Rango

múltiple de Tukey.



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III. RESULTADOS

5.1. Efecto del Ácido Indol Butírico sobre el enraizamiento de estacas:

El enraizamiento de estacas apicales y basales en C. moschata fue de 100%, tanto en

aquellas que fueron tratadas con IBA como en las plantas control. Se observó 2 raíces

principales en cada estaca y numerosas raíces secundarias.

5.2. Efecto del Ácido Indol Butírico sobre número de raíces secundarias:

Los resultados muestran que el número de raíces secundarias presenta variación en

relación la concentración de IBA aplicado y al tipo de estaca. El número de raíces

secundarias en el segmento proximal de la raíz principal (raíz adventicia formada en la

estaca), fue mayor en estacas basales sometidas a 400 ppm de IBA (14 raíces), y menor

en estacas apicales sin aplicación de IBA (7 raíces). De igual manera, ocurrió en el

segmento distal de las raíces principales, donde se obtuvieron 10 raíces en estacas

basales y 5 en apicales (Tabla 1).



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Tabla 01: Número de raíces secundarias promedio por segmento y tipo de estaca

de Cucurbita moschta Duchesne “loche” expuestas a diferentes concentraciones de

IBA y cultivadas durante 30 días.

Tipo de Estaca Concentración de

IBA (Ppm)

Segmento de raíz adventicia

Proximal Distal

APICAL 0 7 5

200 11 6

400 9 6

600 10 6

BASAL 0 10 7

200 11 8

400 14 10

600 10 8



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Al analizar los datos estadísticamente, los resultados muestran que, en estacas apicales,

el número de raíces secundarias del segmento proximal de la raíz, aumentó

significativamente, teniendo mayor significancia a los 200 ppm de IBA y menor

significancia a los 400 y 600 ppm de IBA. En estacas basales, el número de raíces

secundarias aumentó significativamente hasta los 400 ppm de IBA y a partir de esta

concentración no hubo diferencia significativa respecto al control (0 ppm de IBA).

Además, al comparar el número de raíces secundarias de estacas apicales y basales, se

aprecia que sólo hay diferencia significativa cuando ambos tipos de estaca fueron

expuestas a 0 y 400 ppm de IBA, mientras que al ser tratadas con 200 y 600 ppm de

IBA no se muestran diferencias significativas.

También cabe destacar que en el segmento proximal de la raíz, la diferencia en el

número de raíces secundarias de estacas apicales y basales fue mayor cuando éstas

fueron expuestas a 400 ppm de IBA (Fig. 1).

Figura 1. Número de raíces secundarias promedio en el segmento proximal de

raíces adventicias provenientes de estacas apicales y basales de Cucurbita

moschta Duchesne “loche” expuestas a diferentes concentraciones de IBA y

cultivadas durante 30 días. Letras distintas indican diferencia significativa (p<0.05) y

las barras verticales indican el error estándar.



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Para el segmento distal de la raíz principal, los resultados muestran que el número de

raíces secundarias de las estacas apicales sometidas a 200, 400 y 600 ppm de IBA no

presenta diferencia significativas entre sí, pero hubo aumento significativo en

comparación al control (0 ppm de IBA). Mientras que, en estacas basales, el número de

raíces secundarias, aumentó significativamente, teniendo mayor significancia hasta los

400 ppm de IBA y menor significancia a los 600 ppm de IBA. Además, al comparar el

tipo de estaca, se observa que el número de raíces secundarias es significativamente

distinto en todas las concentraciones de IBA (0, 200, 400 y 600 ppm de IBA).

Por otra parte, cuando las estacas apicales y basales fueron expuestas a 400 ppm de

IBA, la diferencia en el número de raíces secundarias fue mayor (Fig. 2).

Figura 2. Número de raíces secundarias promedio en el segmento distal de raíces

principales provenientes de estacas apicales y basales de Cucurbita moschta Duchesne

“loche” expuestas a diferentes concentraciones de IBA y cultivadas durante 30 días.

Letras distintas indican diferencia significativa (p<0.05) y las barras verticales indican el

error estándar.



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5.3. Efecto del Ácido Indol Butírico sobre Longitud de Raíz Principal:

Para Longitud de raíz principal los resultados muestran variaciones en relación a las

concentraciones de IBA y al tipo de estaca. Se observa que, la mayor longitud de raíz

principal (8.792 cm) se presentó en estacas basales sometidas a 400 ppm de IBA y la

menor longitud (5.431), en estacas apicales que no fueron expuestas a IBA (Tabla 1).

Tabla 02: Longitud promedio de raíz principal en estacas apicales y basales de

Cucurbita moschta Duchesne “loche” expuestas a diferentes concentraciones de

IBA y cultivadas durante de 30 días.

Tipo de Estaca Concentración de IBA

( ppm)

Longitud de raíz (cm)

Apical 0 5.431

200 6.208

400 5.796

600 5.896

Basal 0 5.671

200 6.985

400 8.792

600 5.831



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La longitud de la raíz principal de estacas apicales sólo presentó aumento significativo

cuando estas son expuestas a 200 ppm de IBA, por encima de esta concentración, no

hay diferencias significativas respecto al control (0 ppm de IBA). En las estacas basales,

la longitud de raíces principales aumentó significativamente hasta los 400 ppm de IBA,

por encima de esta concentración, la longitud de raíz, no presentó diferencia

significativa respecto al control (0 ppm de IBA). Además, al comparar la longitud de

raíz principal de estacas apicales y basales, se aprecia que hay diferencia significativa

cuando ambos tipos de estaca fueron expuestas a 200 y 400 ppm de IBA, mientras que

al ser tratadas con 0 y 600 ppm de IBA no se presentan diferencias significativas (Fig.

3). Cabe destacar que cuando las estacas apicales y basales fueron expuestas a 400 ppm

de IBA, la diferencia en la longitud de raíz fue significativamente mayor (2.996 cm.)

(Fig. 3).

Figura 3. Longitud promedio de raíces principales en estacas apicales y basales de

Cucurbita moschta Duchesne “loche” expuestas a diferentes concentraciones de IBA y

cultivadas después de 30 días. Letras distintas indican diferencia significativa (p<0.05) y las

barras verticales indican el error estándar.



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5.4. Efecto del Ácido Indol Butírico sobre Longitud de Planta:

Los resultados muestran que la longitud de planta presenta variaciones en relación a las

concentraciones de IBA y al tipo de estaca. Así, se observa que la mayor longitud de

planta (26.063 cm) se presentó en aquellas provenientes de estacas basales sometidas a

400 ppm de IBA y la menor longitud (21.021 cm), en estacas apicales que no fueron

tratadas con IBA.

La longitud de las plantas provenientes de estacas apicales, sometidas a 0 y 400 ppm de

IBA se diferencia significativamente de la longitud de plantas procedentes de estacas

apicales expuestas a 200 y 600 ppm de IBA. En estacas basales, la longitud de planta

presenta diferencias significativas cuando estas son sometidas a 200 y 400 ppm de IBA,

mientras que al ser expuestas a 0 y 600 ppm de IBA, no se muestra diferencias

significativas. Además, al comparar la longitud de las plantas provenientes de estacas

apicales y basales, se aprecia que hay diferencia significativa cuando ambos tipos de

estaca fueron expuestas a 0, 200 y 400 ppm de IBA, mientras que al ser tratadas con 600

ppm de IBA no se presentan diferencias significativas entre estacas apicales y basales

(Fig. 4). Cabe resaltar que cuando ambos tipos de estaca fueron expuestas a 400 ppm de

IBA, la diferencia en la longitud de raíz fue significativamente mayor (4.917 cm.) (Fig.

4).



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Figura 4. Longitud promedio de planta proveniente de estacas apicales y basales de

Cucurbita moschta Duchesne “loche” expuestas a diferentes concentraciones de IBA y

cultivadas durante de 30 días. Letras distintas indican diferencia significativa (p<0.05) y las

barras verticales indican el error estándar.



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IV. DISCUSIÓN

Las especies de Cucurbitaceas tienen una tendencia natural a producir raíces

adventicias en los nudos, o bien, estás pueden ser inducidas por la aplicación exógena

de sustancias enraizantes (Whitaker y Davis, 1962). Este comportamiento ha sido

observado durante el presente estudio, donde se encontró un 100% de enraizamiento en

estacas apicales y basales de C. moschata, tratadas con diferentes concentraciones de

IBA; esta tendencia también fue reportada en Cucumis melo, donde se estimuló el

enraizamiento de estacas en solución nutritiva, utilizando bajas concentraciones de IBA

(4 ppm) obteniendo un 90% de éxito en el enraizamiento y brotación de yemas (Foster,

1963).

El alto porcentaje de enraizamiento observado en estacas de C. mostacha, podría

atribuirse al defoliado adecuado realizado a las estacas, ya que se habría mantenido la

turgencia y actividad fotosintética necesaria durante el proceso de enraizamiento. El

defoliado se fundamenta en la disminución de la tasa de transpiración, como las hojas

determinan la mayor pérdida de agua por transpiración, se recomienda separar las hojas

de las estacas a fin que estas mantengan el estado hídrico adecuado (Gil, 1995). No

obstante, también es necesario una superficie foliar mínima para asegurar la fotosíntesis

necesaria para satisfacer las necesidades correspondientes al crecimiento y desarrollo

del sistema radical y a la vida de la estaca (Ruiz, 2009); por lo que es necesario llevar a

cabo la defoliación o recorte de hojas a un tamaño tal que proporcione el mejor balance

entre las desventajas de la transpiración y las ventajas de la fotosíntesis (Mesen, 1998).

Así también, un factor que sumó al enraizamiento de las estacas de C. moschata en esta

investigación, sería el sustrato utilizado, perlita, debido a que este brinda un pH neutro



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y buen drenaje, que son condiciones requeridas en la propagación vegetativa de las

cucúrbitas (De Gracia, y col.; 2003)

Respecto al número de raíces secundarias, en este estudio se presentó variación en

relación a la concentración de IBA aplicado, así como al tipo de estaca. Los resultados

muestran que el número de raíces secundarias en los segmentos proximal y distal de la

raíz fue significativamente mayor en estacas basales (14 y 10 raíces, respectivamente)

sometidas a 400 ppm de IBA; mientras que la menor cantidad de raíces secundarias, se

obtuvo en estacas apicales sin aplicación de IBA (7 y 5 raíces, respectivamente). Similar

tendencia se observa en otras especies, para el número de raíces por estaca; así, en

estacas apicales de Chrysobalanus icaco tratadas con 10000 mg/kg de AIB se obtuvo

26,1 raíces por estaca y en las estacas basales se registraron 38,6 raíces por estaca

(Fernández, y col.; 2004). En Malpighia glabra, la mayor cantidad de raíces se obtuvo

en estacas basales, al aplicar 750 mg/l de AIB con un promedio de 0,8 raíces por estaca,

comparada con estacas apicales donde la dosis de 3000 mg/l de AIB, produjo sólo 0,08

raíces por estaca (Guerrero, y col.; 2005). El mayor número de raíces en estacas basales

, puede ser explicado por su condición nutricional, debido a que este tipo de estacas

tienen un mayor contenido de carbohidratos (Hartmann y Kester, 2001; Salisbury y

Ross, 2000), los cuales juegan un papel muy importante en la formación de raíces

adventicias, ya que sirven como una fuente de esqueleto de carbono necesarios para la

formación de nuevos productos metabólicos; de éstos, los fosforilados intervienen

durante la iniciación radical, donde la vía respiratoria cambia de pentosa fosfato a la

glicolítica, lo que permite al nuevo tejido meristemático a recibir esqueletos de carbono

que serán necesarios para el desarrollo de nuevas raíces (Veierskov, 1988). Este patrón

se ajusta y posiblemente explica los resultados obtenidos en el presente estudio.



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Los bajos valores en el número de raíces secundarias, obtenidos en las estacas sin

tratamiento de IBA, podría deberse a que el contenido de auxina natural en las estacas

de C. moschata, sea bajo, situación que impide su enraizamiento aun cuando se colocan

en un buen sustrato y con alta humedad. Generalmente, la proporción alta de auxina

y baja citoquinina, favorece la formación de raíces adventicias, en cambio, cuando es

baja en auxina y alta en citoquinina se favorece la formación de brotes. Es por ello que

las especies que en su naturaleza poseen altos niveles de citoquinina son más

difíciles de enraizar que las que tienen niveles bajos (Hartmann y Kester, 1995).

Por otra parte, la longitud de la raíz principal, presentó diferencia significativa al aplicar

distintas concentraciones de IBA, en comparación al control. Estos resultados son

comparables con resultados trabajados en N. alessandrii, se reporta que a medida que

aumenta la concentración hormonal mejora la longitud de las raíces (Santelices y

García 2003), y aumentan los valores de longitud de raíces a mayores temperaturas y

mayores concentraciones de IBA trabajados en Coriaria myrtifolia Linn. (Melgares, y

col.; 2002). Además, otro estudio describe que en la solanácea Physolis ixocarpa,

tratamientos con concentración de 1.000 y 1.500 mg/L de IBA incrementan la

longitud de las raíces (García, y col.; 2001). Similarmente, se informa que en Gmelina

arbórea, la longitud de raíces emitidas aumentó con la aplicación de IBA, por lo que el

uso de esta auxina aceleró la formación y crecimiento inicial de las raíces adventicias en

las estacas. 9.5 cm (0 mg/g) y 12 cm (2 mg/g) (Ruiz, y col.; 2005). De igual modo, la

longitud de raíz en estacas de Malpighia glabra con la aplicación de 5000 ppm de IBA

fue de 4.22cm, mientras que en el testigo se obtuvo 2.06cm. (Guerrero, y col.; 2005).

Este comportamiento, podría deberse al diferente tiempo requerido para la formación de

las raíces en las estacas, tal como es observado en aquellas diferentes concentraciones



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de IBA y que enraizaron antes que las estacas sin aplicación de IBA, presentando, por lo

tanto, mayor tamaño al finalizar el periodo de evaluación.

Al comparar el tipo de estaca, la longitud de raíz principal, fue mayor (8.792 cm) en

estacas basales sometidas a 400 ppm de IBA. En este caso, al igual que el número de

raíces, la mayor longitud de raíces en estacas basales, pudo deberse a la mayor

acumulación de carbohidratos en estas estacas, pues se considera que los carbohidratos

se acumulan en la base de las ramas, lo que conduciría a la formación temprana de

indicios de raíces en las estacas obtenidas de estas zonas y bajo la influencia de

sustancias promotoras de las yemas y hojas (Hartmann y Kester, 2001; Veierskov,

1988). Esto ha sido corroborado en Plukenetia volubilis, L, donde las estaquillas que

presentaron raíces con mayor longitud (4.24 cm) fueron las basales, aunque este valor

no se diferenció significativamente del control (3.7 cm) (Ruiz y Mesén, 2010).

La longitud de la raíz principal de estacas apicales sólo presentó aumento significativo

cuando estas fueron expuestas a 200 ppm de IBA, respecto al control (0 ppm de IBA),

mientras que en estacas basales, la longitud de raíces principales aumentó

significativamente hasta los 400 ppm de IBA, por encima de esta concentración, la

longitud de raíz, no presentó diferencia significativa respecto al control (0 ppm de IBA),

posiblemente, esto ocurrió porque estas concentraciones son las más estimulantes para

el crecimiento radicular. No obstante, existe un límite muy estrecho entre la cantidad

óptima para estimular el enraizado y la cantidad que es perjudicial, se considera que una

concentración inferior al punto tóxico es la más favorable para la formación de raíces

(Cuculiza, 1956). Sin embargo, las concentraciones excesivas pueden dar lugar a la

inhibición del desarrollo de la planta, amarillamiento de las hojas, abscisión de las



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hojas, ennegrecimiento de tallos e incluso muerte de las estacas (Cerveny y Gibson,

2005).

En cuanto a la longitud de planta, se observó que la mayor longitud (26.063 cm) se

presentó en aquellas provenientes de estacas basales sometidas a 400 ppm de IBA y la

menor longitud (21.021 cm), en estacas apicales que no fueron tratadas con IBA, lo cual

es proporcional al crecimiento encontrado en las raíces, teniendo que a mayor longitud

de raíz, el tamaño de las plantas aumento; lo que podría deberse es que las plantas al

tener mayor cantidad de raíces secundarias y mayor longitud de raíz tienen la ventaja de

absorber mayor los nutrientes y agua para el crecimiento y desarrollo de la planta

(Veierskov, 1988).



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V. CONCLUSIONES

Las estacas apicales y basales en C. moschata Duch. expuestas a 0, 200, 400 y

600 ppm de Ácido Indol Butírico enraizaron (2 raíces por estaca) en un 100%

utilizando como sustrato perlita.

La longitud de la raíz principal fue mayor en estacas basales de C. moschata

Duch. Expuestas a 200 ppm y 400 ppm de Ácido Indol Butírico.

La aplicación de Ácido Indol Butírico a una concentración de 400 ppm

promueve en estacas basales de C. moschata Duch. un mayor número de raíces

secundarias, longitud de raíz y longitud de planta.



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24

VI. REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS

- Acosta E., Sánchez J. y Bañón M. 2000. Auxinas. Fundamentos de fisiología

vegetal. 1ra Edición. Editorial McGrawn-Hill/Interamericana de España, S. A.

U. Edicions Universitat de Barcelona. 305-323 p.

- Alfaro C. 2006. La importancia del Ayote en Costa rica. Boletín de ciencia y

tecnología. 47 P.

- Avilán L., Leal F. y Bautista D. 1992. Manual de Fruticultura. Principios y

manejo de la producción. 2da Edición. Editorial América C. A. Caracas,

Venezuela. 1467 p.

- Awad G. 1993. Propagación vegetativa de seis especies vegetales nativas con

posibilidades ornamentales. Tesis Lic. Agronomía Universidad Austral de Chile.

Facultad de Ciencias Agrarias. Valdivia. 66 p.

- Azcón J. y Talón M. 2000. Fundamentos de Fisiología Vegetal. Barcelona,

España. Ediciones McGraw-Hill Interamericana. 520 p.

- Bardales R. y Pinedo M. 2006. Efecto de tres concentraciones de ácido

indolbutírico en tres diámetros de estaca en el enraizamiento y brotamiento del

camu camu Myrciaria dubia McVaugh.

- Bemis W. 1963. Interspecific hybridization in Cucurbita: II C. moschata Poir. X

xerophytic species of Cucurbita. Journal of Heredity. 54:285–289.



DIRECCIO

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FORMÁTI

CA Y C

OMUNICACIÓ

N

25

- Camoglino C. 2002. Multiplicación rápida de estacas herbáceas y leñosas de

Vitis vinífera L. de la variedad Cabernet Sauvignon mediante enraizamiento en

agua utilizando ácido indolbutírico.

- Cerveney C. and Gibson J. 2005. Rooting Hormones: Rooting Hormones are

Essential for some crops; find out which ones, which hormones to use and how

to use them. 36-44 p.

- Chengrui. 1999. Health-protection composition of pumpkin. Cucurbit Genetics

Cooperative Report. 22: 59-60.

- Cuculiza P. 1956. Propagación de plantas. Editorial P. L. Villanueva S. A. Lima,

Perú. 289 p.

- De Gracia N., Guerra J. y Cajar A. 2003. Guía para el Manejo Integrado del

Cultivo de Zapallo. Panamá. Instituto de Investigación Agropecuaria de

Panamá: 114 p.

- FAO. 2009. Estadísticas agrícolas mundiales.

- Fernández A., Ramírez M. y Vargas G. 2004. Tratamientos con ácido

indolbutírico y lesionado sobre el enraizamiento de estacas de icaco

(Chrysobalanus icaco L.). Agronomía Trop. 54 (2): 203-218.



DIRECCIO

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FORMÁTI

CA Y C

OMUNICACIÓ

N

26

- Flores E., Moratinos P. y Ramírez M. 2010. Enraizamiento de estacas de

Malpighia glabraL. y M. emarginata D. C. con ácido indolbutírico. Rev. Pan.

Ecofisiología y Fisiología vegetal. 12 (2): 161.

- Foster R. 1963. Effects of regulators grown on rooting of Cucumis melon. Proc.

Amer. Soc. hort. Sci. 82: 397-402.

- Foster R. 1964. Effects of temperatura on rooting of Cucumis melon. J. Ariz.

Acad. Sci. Proc. Amer. Soc. hort. Sci. 85: 129-156.

- García A., y Fernández N. 2009. Propagación asexual del matapalo extranjero

(Ficus benjamina L.) por medio de estaquillado. 131 p.

- García L., Jiménez, Peña y Rodríguez. 2001. Propagación vegetativa en tomate

de cáscara (Physalis ixocarpa Brot.) mediante enraizamiento de esquejes.

Agricultura Técnica México. 27 (1): 27-33.

- Geneve R. y Hauser C. 1982. The effect of AIA, AIB, ANA y 2,4-D on root

formation and ethylene evolution in Vigna radiata cuttings”. J. Amer. Soc.

Hortic. Science 19: 320-329.

- Gil F. 1995. Elementos de fisiología vegetal. Edit. Mundiprensa. España.

- Guerrero R., Rivero G., Ramírez M. y Sthormes G. 2005. Enraizamiento de

estacas apicales y sub-apicales de Malpighia glabra. Rev. Fac. Agron.: Luz. 22:

33-40



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N

27

- Guerrero R., Rivero G., Ramírez M. y Sthormes G. 2009. Evaluación del efecto

del sustrato de enraizamiento y la aplicación de Ácido Indolbutírico sobre el

enraizamiento de estacas de Semeruco (Malpighia emarginata D. C.).

- Gwanama C., Labuschagne M. and Botha A. 2000. Analysis of genetic variation

in Cucurbita moschata by random amplified polymorphic DNA (RAPD)

markers. Euphytica. 113: 19-24.

- Hartmann T. y Kester D. 1999. Propagación de plantas. Principios y Prácticas.

Séptima reimpresión. Compañía Editorial Continental, México. 757 p.

- Hartmann H. y Kester D. 2001. Propagación de Plantas. Principios y Prácticas.

Octava Reimpresión. Editorial Continental. México. 760 p.

- Hazara P., Mandal A., Dutta A., Sikadar D., and Pandit M. 2007. Breeding

pumpkin (C. moschata Dutch.) for high yield and carotene content, en:

International Conference on Indigenous Vegetables and Legumes. Prospectus

for Fighting Poverty, Hunger and Malnutrition. Acta Horticulturae 752.

- Hernández S. y Leal. F. 1997. Enraizamiento de estacas de cacao. Revista

UNELLEZ de Ciencia y Tecnología. 15: 1-12.

- IDIAP. 2003. Guía para el Manejo Integrado del Cultivo de Zapallo. 38 p.



DIRECCIO

N DE S

ISTE

MAS DE IN

FORMÁTI

CA Y C

OMUNICACIÓ

N

28

- Latsague M., Sáez P. y Hauenstein E. 2008. Inducción de enraizamiento en

estacas de Berberidopsis corallina con ácido indolbutírico. Bosque 29 (3): 227-

230.

- Latsague M., Sáez P. y Yáñez J. 2009. Efecto del ácido indolbutírico en la

capacidad rizogénica de estacas de Eucryphia glutinosa. Bosque. 30 (2): 102-

105.

- León J. 1987. Botánica de los cultivos tropicales. 2da Edición. Instituto

Interamericano de Ciencias Agrícolas IICA. San José. 487 p.

- León J. 2000. Botánica de los cultivos tropicales. 3ra. Edición. Editorial

Agroamérica. Rev. 146-149 p.

- Lira S. 1995. Estudios taxonómicos ecogeogáficos de las Cucurbitáceas

latinoamericanas de importancia económica. IPGI, UNAM. México. 281 p.

- Melgares de Aguilar J., Bañon S., Fernández M. y Balenzategui. 2002.

Influencia de diferentes temperaturas de sustrato y concentraciones de

ácido indolbutírico en el esquejado de Coriaria myrtifolia. España. Actas de

Horticultura, X Congreso Nacional de Ciencias Hortícolas. 522-524 p.

- Mesen F. 1998. Enraizamiento de estacas juveniles de especies forestales:uso

de propagadores de sub-irrigación. Manual técnico N° 30. CATIE, Proyecto

prosefor. Turrialba, Costa Rica.



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N

29

- Mockaitis J. and Peterson. 1962. Vegetative propagation of cucumbers and

muskmelons for breeding and genetic studies. Paper presented before the Amer.

Soc. Hort. Sci. 59 th Ann. Meeting. Corvallis, Oregon.

- Oberschelp G. y Marcó M. 2010. Efecto del ácido 3-indolbutírico sobre el

enraizamiento adventicio y la altura de plantines clonales de Prosopis alba

Grisebach. Revista de Ciencias Forestales – Quebracho. 18 (1,2): 112-119.

- Peredo J. 2009. Proyecto Especial Chavimochic. Trabajo experimental en

cultivo de C. moschata. 15 p.

- Ramírez M., Urdaneta A. y Vargas G. 2004. Tratamientos con Ácido

indolbutírico y lesionado sobre el enraizamiento de estacas de Icaco

(Chrysobalanus icaco L.). Agronomía Trop. 54 (2): 203-218.

- Ruiz H. y Mesén F. 2009. Efecto del ácido indolbutírico y tipo de estaquilla en

el enraizamiento de Sacha Inchi (Plukenetia volubilis L.). San Pedro de Montes

de Oca. Agron. Costarricense. 34 (2).

- Ruiz R., Vargas J., Cetina V. y Villegas A. 2005. Efecto del ácido indolbutírico

(aib) y tipo de estaca en el enraizado de Gmelina arbórea Roxb. Rev. Fitotec.

Mex. 28 (4): 319 – 326.

- Salisbury F. y Ross C. 2000. Fisiología de las plantas. 1ra Edición. Editorial

Paraninfo Thomson Learning. España. 988 p.



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N

mailto:[email protected],%[email protected]

30

- San Miguel F., Michelangeli De Clavijo C., Basso C. y Trujillo A. 1999.

Enraizamiento de estacas de onoto. Agronomía Tropical. 49: 60-79.

- Santelices R. y García. 2003. Efecto del ácido indolbutírico y la ubicación

de la estaca en el rebrote de tocón sobre la rizogénesis de Nothofagus

alessandrii Espinosa. Bosque 24(2): 53-61

- Vallejo A. y Gil O. 1998. Efecto de la endocría sobre algunos caracteres

agronómicos del zapallo, Cucurbita moschata Poir. Acta Agronómica. 48: 46-

50.

- Veierskov B. 1988. Relations between carbohydrates and adventitious root

formation. Adventitious root formation in cuttings. Dioscorides Press. U.S.A. 2:

70-79.

- Weaver R. 1990. Reguladores del crecimiento de las pantas en la agricultura.

Séptima reimpresión. Editorial Trillas. México. 622 p.

- Whitaker T. y Davis G. 1962. Botánica de las Cucurbitáceas. Cultivo y

utilización. Interscience Publishers, Inc., New york.

.



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ANEXOS



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ANEXO 01

Tabla 3. Análisis de Varianza simple para Longitud de Raíz de C. moschata

duchesne.

Fuente Suma de

Cuadrados

Gl Cuadrado

Medio

Razón-F Valor-P

Entre grupos 203.254 7 29.0362 24.25 0.0000

Intra grupos

220.356 184 1.19759

Total (Corr.) 423.61 191

Tabla 4. Contraste Múltiple de Rango (Tukey) para Longitud de Raíz de C.

moschata duchesne

SEGMENTO DE ESTACA

DOSIS

IBA (ppm)

Media

SIGNIFICANCIA

Apical 0 5.43125 a

Basal 0 5.67083 A

Apical 400 5.79583 A

Basal 600 5.83125 A

Apical 600 5.89583 A

Apical 200 6.20833 Ab

Basal 200 6.98542 B

Basal 400 8.79167 C



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Tabla 5. Análisis de Varianza simple para número de raíces secundarias segmento

proximal de C. moschata duchesne.

Fuente Suma de

Cuadrados

Gl Cuadrado

Medio

Razón-F Valor-P

Entre grupos 589.62 7 84.2314 24.01 0.0000

Intra grupos 645.375 184 3.50747

Total (Corr.) 1234.99 191

Tabla 6. Contraste Múltiple de Rango (Tukey) para número de raíces secundarias

segmento proximal de C. moschata duchesne.

SEGMENTO DE

ESTACA

DOSIS DE

IBA (ppm)

Media

SIGNIFICANCIA

Apical 0 7.02083 a

Apical 400 9.27083 b

Apical 600 9.54167 bc

Basal 0 9.6875 bc

Basal 600 10.2083 bc

Apical 200 10.9583 C

Basal 200 10.9792 C

Basal 400 13.625 D



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Tabla 7. Análisis de Varianza simple para número de raíces secundarias segmento

distal de C. moschata duchesne.

Fuente Suma de

Cuadrados

Gl Cuadrado

Medio

Razón-F Valor-P

Entre grupos 353.703 7 50.529 12.31 0.0000

Intra grupos 755.542 184 4.1062

Total (Corr.) 1109.24 191

Tabla 8. Contraste Múltiple de Rango (Tukey) para número de raíces secundarias

segmento distal de C. moschata duchesne.

SEGMETNO DE ESTACA

DOSIS DE

IBA ( ppm)

Media

SIGNIFICANCIA

Apical 0 5.04167 a

Apical 400 6.20833 ab

Apical 600 6.25 ab

Apical

200 6.41667 ab

Basal 0 6.625 abc

Basal

600 7.75 bc

Basal

200 8.41667 cd

Basal 400 9.58333 d



DIRECCIO

N DE S

ISTE

MAS DE IN

FORMÁTI

CA Y C

OMUNICACIÓ

N

35

Tabla 9. Análisis de Varianza simple para longitud de Planta de C. moschata

duchesne.

Fuente Suma de

Cuadrados

Gl Cuadrado

Medio

Razón-F Valor-P

Entre grupos 486.877 7 69.5538 9.96 0.0000

Intra grupos 1285.0 184 6.98371

Total (Corr.) 1771.88 191

Tabla 10. Contraste Múltiple de Rango (Tukey) para Longitud de planta de C.

moschata duchesne.

SEGMENTO DE ESTACA

DOSIS DE

IBA (ppm)

Media

SIGNIFICANCIA

Apical 0 21.0208 a

Apical 400 21.1458 a

Apical 600 21.2708 ab

Basal 0 22.0792 ab

Basal 600 22.1458 ab

Apical 200 23.35 ab

Basal 200 23.5417 B

Basal 400 26.0625 C



DIRECCIO

N DE S

ISTE

MAS DE IN

FORMÁTI

CA Y C

OMUNICACIÓ

N

36

ANEXO 02

Figura 5. Plantas de Cucurbita moschata Duchesne cultivadas en sustrato perlita con

diferentes concentraciones de Ácido Indol butírico.

Figura 6. Unidades experimentales, al inicio del tratamiento



DIRECCIO

N DE S

ISTE

MAS DE IN

FORMÁTI

CA Y C

OMUNICACIÓ

N

37

Figura 7. Plantas apicales de Cucurbita moschata Duchesne al finalizar la exposición a

los tratamientos.

Figura 8. Plantas Basales de Cucurbita moschata Duchesne al finalizar la exposición a

los tratamientos.

0 ppm IBA

600 ppm IBA

600 ppm

IBA

400 ppm

IBA

200 ppm

IBA 0 ppm

IBA

400 ppm

IBA

200 ppm

IBA



DIRECCIO

N DE S

ISTE

MAS DE IN

FORMÁTI

CA Y C

OMUNICACIÓ

N

38

Figura 9. Desarrollo y Crecimiento de Raíces adventicias de Cucurbita moschata

Duchesne. Despúes de 30 días de tratamiento con AIB.

Figura 10. Medición de longitud de raíz y planta de Cucurbita moschata

Duchesne. Despúes de 30 días de tratamiento con AIB.



DIRECCIO

N DE S

ISTE

MAS DE IN

FORMÁTI

CA Y C

OMUNICACIÓ

N

39

Figura 11. Plantas apicales con nuevo crecimiento de Cucurbita moschata Duchesne.

Despúes de 30 días de tratamiento con AIB



DIRECCIO

N DE S

ISTE

MAS DE IN

FORMÁTI

CA Y C

OMUNICACIÓ

N

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