Manual Toma de Muestras Microbiología.

Manual Toma de Muestras Microbiología

Manual Toma de Muestras

Microbiología.

Elaborado por: Revisado por: Aprobado por: TM. M. Elena Díaz F.

TM. Maximiliano

Ramírez A. TM. Antonio Sanaguas

I.

Dr. Sonia Correa

BQ. Rodrigo González.

Dr. Adriana Pinto T.

Fecha: 01/08/2011 Fecha: 21/09/2011 Fecha: 21/09/2011

Firmas

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Manual Toma de Muestras Microbiologia.

Código: SGC-LC-TMB V0

Fecha: 21 sept. 2011

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INDICE

INTRODUCCION 3

Requisitos para una buena toma de muestra 3

Uso correcto de las órdenes de exámenes 5

NORMA DE TOMA DE CULTIVOS 6

COMITE DE INFECCIONES ASOCIADAS

A LA ATENCION DE SALUD IAAS 7

Criterios de Rechazo de Solicitudes y/o Muestras 7

CULTIVO DE ANAEROBIOS 8

CULTIVO ASPIRADO ENDOTRAQUEAL CUANTITATIVO (AET) 10

CULTIVO LÍQUIDO BILIAR 12

CULTIVO CATETER VENOSO CENTRAL 13

COPROCULTIVO 14

EXPECTORACION 15

CULTIVO FARINGEO 16

HEMOCULTIVO 17

Relación sangre / caldo y tipos de frascos 18

HEMOCULTIVOS CUANTITATIVOS 20

BACTEREMIA ASOCIADA A CVC. 22

INFECCIONES A LA PIEL Y TEJIDO SUBCUTANEO 23

LESIONES SUPERFICIALES ERITOMATOSAS 23

ULCERAS Y NODULOS 25

SENOS PARANASALES 26

INFECCIONES DE HERIDAS 27

MORDEDURAS 28

LAVADO BRONCO-ALVEOLAR 29

LEUCOCITOS FECALES 30

LIQUIDO ASCITICO 31




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LIQUIDO ARTICULAR O SINOVIAL 32

CULTIVO LÍQUIDO CEFALORRAQUIDEO (LCR) 34

LIQUIDO PERITONEAL 36

LIQUIDO PLEURAL 37

CULTIVO NASAL 38

MYCOPLASMA HOMINIS Y UREAPLASMA UREALYTICUM 39

CULTIVO OCULAR 40

CULTIVO OTICO 41

ROTAVIRUS Y ADENOVIRUS en deposiciones. 42

CULTIVO SENOS PARANASALES 43

CULTIVO TEJIDOS, BIOPSIAS y ABSCESOS. 44

MUESTRAS DEL TRACTO GENITAL FEMENINO. 46

MUESTRAS DEL TRACTO GENITAL MASCULINO 48

UROCULTIVO. 50

VIRUS RESPIRATORIOS POR IFI. 53

BORDETELLA POR IFD. 55

BIBLIOGRAFIA. 58




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INTRODUCCION

El diagnostico de las enfermedades infecciosas, se basa en el estudio de

los síntomas y signos clínicos, así como en la demostración de la presencia del

agente, de sus productos o de la huella que este ha dejado en su contacto con el

sistema inmune del individuo.

El diagnóstico clínico es, en muchos casos, orientador luego de evaluar los

datos que ofrecen la historia clínica y la exploración, pero, la confirmación de un

diagnóstico clínico, requiere, en enfermedades infecciosas, del diagnóstico

etiológico que confiere el laboratorio de Microbiología Clínica.

La información diagnostica que el laboratorio de Microbiología puede

proporcionar, depende de la calidad de la muestra recibida.

Una muestra mal tomada, en escasa cantidad o mal transportada,

determinara un posible fallo en la recuperación de o los agentes patógenos,

induciendo errores en el diagnóstico, como también en un tratamiento inadecuado

del enfermo.

Requisitos para una buena toma de muestra.

1. Personal idóneo en la toma de muestra. 2. Indicaciones claras al paciente respecto del examen se le va a realizar. 3. Preparación adecuada del paciente, como aseo previo, uso de antisépticos,

uso de tapón vaginal, cuando corresponda. 4. Muestra representativa del proceso infeccioso. 5. Muestra tomada antes del tratamiento antimicrobiano. De lo contrario

especificar en la orden. 6. Muestra tomada con la cantidad adecuada. 7. Uso correcto de los medios de transporte.




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MUESTRA MEDIO DE TRANSPORTE

Aspirado nasofaríngeo para virus respiratorios. Buffer pH 7.2.

Aspirado nasofaríngeo para Bordetella. Suero fisiológico.

Coprocultivo. Cary Blair.

Secreciones en tórula. Stuart.

8. Número de muestras adecuada. 9. Las muestras recolectadas en tubos estériles sin medio de transporte, deben

enviarse al laboratorio a la brevedad. 10. Como bioseguridad, las muestras deben transportarse al laboratorio, dentro de

unidades térmicas, sin hielo o unidad refrigerante, a excepción de los aspirados nasofaríngeos para pesquisa de virus respiratorios.

11. Especificar examen solicitado, bacteria o grupo de microorganismo que se

desea pesquisar, Ej.

Anaeróbios.

Hongos, Levaduras.

Difteria.

Gonococo.

Vírus Respiratório.

Enterococo de deposición.

12. Frente a cualquier duda o consulta referente a determinada muestra, resultado de examen, toma de muestra que no aparezca en este manual, etc., contactarse con el laboratorio de Microbiología, en horario de 8.00 – 16.50 hrs. de lunes a viernes o con el tecnólogo médico de turno fuera de este horario.

13. Es importante que la solicitud de examen, especifique la edad del paciente, ya

sea porque algunos hallazgos bacteriológicos se deben enviar al Instituto de Salud Pública con todos los datos o porque algunos procedimientos de uso de algún determinado medio de cultivo, depende exclusivamente de la edad del paciente: flujos vaginales se les agrega Agar Mac Conkey en menores de 14 años; la vigilancia de Vibrio cholerae difiere en aquellos pacientes mayores de 18 años, de los que tienen menos de ésta edad.




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Uso correcto de las órdenes de exámenes.

EXAMEN ORDEN

VIRUS RESPIRATORIO (inmunofluorescencia)

Orden normal de Bacteriología adicionada de IRA grave en caso de estudio de virus influenza AH1N1.

BORDETELLA PERTUSSIS (inmunofluorescencia):

Orden normal de bacteriología

PARALISIS FLACCIDA:

Formulario especial del ISP

SARAMPION:


HANTA VIRUS:





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NORMA DE TOMA DE CULTIVOS.

En relación a la solicitud de cultivos microbiológicos, se recomienda lo

siguiente:

La solicitud de toma de cultivo debe corresponder a una hipótesis diagnóstica de infección, que requiere su confirmación por laboratorio junto a la identificación del agente causal y el antibiograma para realizar tratamiento específico.

No está indicado realizar cultivos rutinarios de vigilancia, como escaras y úlceras de decúbito, TET, CUP, Catéter Venoso Central o al trasladar pacientes desde un servicio a otro, sin una clara sospecha clínica de infección, ya que es sabido que el paciente en menos de 48 hrs. desde su ingreso al establecimiento, es colonizado por microorganismos intrahospitalarios y sus resultados (+) pueden producir confusión y estimular el uso inadecuado de antimicrobianos con el consiguiente aumento de los costos de atención.

Se debe consignar la toma de muestras en la ficha clínica y hoja de enfermería en el caso de traslado de paciente desde un servicio a otro, evitando repetir la toma de muestra.

En el caso de múltiples heridas o escaras con signo de infección, se recomienda la toma de solo una muestra del sitio más representativo (mayor presencia de secreción purulenta), previo aseo con suero fisiológico.

Se debe considerar además, que al solicitar un cultivo se debe esperar su resultado final (hasta 72 hrs.) antes de solicitar nueva muestra, ya que las muestras seriadas en 24 hrs. no han demostrado mejor rendimiento diagnóstico (excepto hemocultivos).

No está indicado tomar muestras de loquios, objetos inanimados, manos y nariz del personal (excepto en estudios de portación en casos de brotes) y de antisépticos y desinfectantes (estudios en casos y condiciones especiales).




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COMITE DE INFECCIONES ASOCIADAS A LA ATENCION DE SALUD IAAS.

Criterios de Rechazo de Solicitudes y/o Muestras

Si las solicitudes y/o las muestras no cumplen los requisitos mínimos

indispensables para su correcto procesamiento el laboratorio deberá aclarar las

discrepancias con el servicio que las envío, previo a su realización y en algunos

casos será imposible su procesamiento hasta tanto se envíe la muestra correcta.

Los siguientes son algunos ejemplos de ello:

A. Discrepancia entre la identificación del paciente que figura en la solicitud del examen y la que figura en el rotulo de la muestra. Acción: Rechazo de la muestra, hasta que se envíe correctamente, por parte del Servicio Clínico.

B. No se indica en la solicitud de examen, el tipo de muestra a analizar y/o procedencia anatómica del mismo. Acción: Llamar al servicio que lo envió. No se procesará hasta tanto se conozcan esos datos, imprescindibles para la realización del estudio.

C. Muestra enviada en frasco no estéril o con conservantes (formol). Acción: Rechazo de la muestra, hasta que se envíe correctamente, por parte del Servicio Clínico.

D. Muestra enviada en envase o tubo con pérdida o derrame Acción: No procesar. Esterilizar la muestra y solicitar una nueva.

E. Muestra inadecuada para realizar el estudio solicitado. Acción: No procesar. Informar al servicio que la muestra es inadecuada e indicar cual muestra deberá enviar.

F. Cultivo anaerobio solicitado en exudado faríngeo, expectoración, orina, secreciones vaginales, úlceras o fístulas entre otras. Acción: No procesar .Comunicarse con el servicio y explicar las razones.

G. Muestra en cantidad insuficiente para realizar los exámenes solicitados: Acción: Solicitar muestra adicional, si no es posible establecer prioridades de procesamiento en acuerdo con el médico tratante.

H. Muestras repetidas por más de una vez en el mismo día, excepto hemocultivos. Acción: Procesar una sola muestra por día y comunicarse al servicio para que justifique el procesamiento de las muestras restantes.

I. Muestra evidentemente contaminada. Acción: Descartar la muestra y solicitar otra.




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CULTIVO DE ANAEROBIOS

TOMA DE MUESTRA: Debe ser realizada por profesional idóneo

SITIO ANATOMICO MUESTRA METODO

SNC

LCR Abscesos Biopsias de tejidos Autopsias o material quirúrgico

Punción Lumbar Aspiraciones con aguja y jeringa

AREA DENTAL (Oído-Nasal-Garganta Senos paranasales)

Abscesos Material de Biopsias Sinusal en Sinusitis crónica. Quirúrgica.

Aspiraciones con jeringa

AREA PULMONAR

Transtraqueal Pulmón Broncoscopía

Aspiración con jeringa Punción percutánea Catéter con protector de doble envoltura.

AREA ABDOMINAL Líquido de paracentesis Abscesos profundos Cirugía

Aspiración con jeringa libre de contaminación intestinal.

TRACTO GENITAL FEMENINO

Laparoscopía quirúrgica Cavidad endometrial Líquido amniótico Placenta

Aspiración con jeringa.

TRACTO URINARIO Orina Aspiración supra púbica

HUESOS Y ARTICULACIONES

Artritis supurativa Material de drenaje después de cirugía: Ej.: Osteomielitis.

Aspiración de Articulaciones. Aspiración profunda.




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TEJIDOS BLANDOS:

Heridas.

Abrir y hacer aspiración profunda del margen orilla o lesión ósea subyacente.

Biopsias

Del fondo de la herida después de limpieza por arrastre con suero fisiológico.

Senos paranasales

Aspiración con jeringa y pequeño catéter plástico después de asepsia de piel con alcohol 70%

Abscesos profundos Celulitis anaerobia. Gangrena vascular infectada.


Mionecrosis gangrenosa Muestras quirúrgicas. Biopsias. Superficies ulcerosas. Pus.


Cantidad de muestra: En lo posible 1-5 ml

Transporte de la Muestra: Se utiliza un medio de transporte comercial para

anaerobios: Portagem de Biomerieux, diseñado

para muestras líquidas. Una vez colocada la

muestra dentro del frasco de transporte,

mantener a temperatura ambiente. Enviar a

laboratorio.

Entrega de Resultados: Informe preliminar a las 48 - 96 horas.




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CULTIVO ASPIRADO ENDOTRAQUEAL CUANTITATIVO (AET).

INDICACIONES:

A todo paciente con sospecha de neumonía asociada a ventilación

mecánica, por más de 48 horas y presencia de criterios clínicos radiológicos, en el

cual no se hayan efectuado cambios de tratamiento antimicrobiano durante las

últimas 72 horas.

TOMA DE MUESTRA:

Debe ser tomada en forma estéril utilizando un catéter de aspiración

introducido en el tubo endotraqueal y conectado el otro extremo del catéter, a un

colector o trampa estéril apropiada.

El procedimiento debe ser realizado por un profesional entrenado con

ayudante. El catéter debe ser introducido hasta encontrar resistencia y no se debe

diluir la muestra con el fin de facilitar su recolección.

Si las secreciones son espesas, se deben aplicar aspiraciones intermitentes

hasta conseguir la muestra.

La muestra debe ser enviada rápidamente al laboratorio, especificando que

se requiere cultivo de aspirado endotraqueal cuantitativo ( AETC ).

TRANSPORTE:

Se transporta en trampa de aspiración, cerrada a temperatura ambiente.

HORARIO DE RECEPCION:

De Lunes a Viernes hasta las 12 AM. No enviar fuera de este horario ni en

días festivos (sin excepción).

ENTREGA DE RESULTADOS:

A las 48 –72 horas. Se informará cada microorganismo aislado con su

recuento de colonias y estudio de sensibilidad correspondiente.




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PUNTO DE CORTE:

Recuento >= 1.000.000 UFC /ml.

Sensibilidad para NAVM : 71 –82 %

Especificidad para NAVM : 83-86 %

Recuento <= 1.000 UFC / ml.: Exclusión de diagnóstico de NAVM.

Recuento entre > 1.000 y < 1.000.000 UFC / ml.: Interpretación según criterios médicos.




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CULTIVO LÍQUIDO BILIAR.

INDICACIONES:

Colangitis

Estudio de portación de Salmonella typhi.

TOMA DE MUESTRA:

La bilis se puede recolectar:

Por punción directa de la vía biliar durante la cirugía.

A través de endoscopia digestiva alta, desde la ampolla de vater.

Recolectar en un tubo estéril sin medio de transporte.

CANTIDAD:

4 a 5 ml. es suficiente. Recolectar en tubo de polietileno estéril, tapa rosca.

TRANSPORTE:

Transportar al laboratorio lo más pronto posible, dentro de unidad de transporte térmico

ENTREGA DE RESULTADOS: A las 48 hrs. mínimo.




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CULTIVO CATETER VENOSO CENTRAL

INDICACIONES:

El estudio de catéteres que se realiza en forma rutinaria a nivel del

Laboratorio de Microbiología es la técnica semicuantitativa de Maki. Esta técnica

permite valorar la contaminación extraluminal del catéter, principal mecanismo por

el cual se contaminan los catéteres de corta permanencia y pueden llegar a ser el

origen de una bacteriemia.

Paciente con catéter venoso central que presente fiebre sobre 38 grados C.

aumento de volumen, enrojecimiento, aumento de temperatura local en sitio de

inserción del catéter, ò que presente fiebre > 38º, sin foco detectado, que se

sospeche bacteremia asociada a CVC, y que se retire el catéter.

TOMA DE MUESTRA:

Desinfectar con alcohol al 70% una zona de piel de unos 10cm correspondientes a la zona de entrada del catéter. Hacerlo en forma de círculos comenzando por el centro.

Retirar el catéter con la máxima asepsia.

Ayudándonos de las pinzas y las tijeras estériles, cortar los 3 cm dístales del catéter que corresponden a la porción intravascular.

Introducir el segmento de catéter en un tubo de polietileno, tapa rosca, estéril, correctamente identificado, o tubo de vidrio sin medio de transporte.

TAMAÑO DE LA MUESTRA:

3 cm de la porción más distal. Porciones mayores dificultan el procesamiento en el

laboratorio. Debe acompañarse de 2 hemocultivos periféricos.

TRANSPORTE:

La muestra deberá enviarse al laboratorio en un periodo inferior a 30

minutos. Cuando esto no sea posible deberá conservarse a 4°C por 12 horas

como máximo. Llevar a laboratorio.





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COPROCULTIVO.

TOMA DE MUESTRA:

La muestra para el cultivo microbiológico puede obtenerse de 2 formas,

dependiendo del estado del paciente:

TORULA RECTAL O SONDA RECTAL:

Estas técnicas se utilizan especialmente en el niño menor.

Con tórula: con tórula de algodón, humedecer en el medio de transporte Cary y Blair en introducir por el recto aproximadamente 2 cm., haciéndole girar suavemente. Volver la tórula al tubo con medio de transporte.

Sonda rectal: Se debe emplear una sonda de NELATON fina y se aspira con jeringa.

Agregar sobre el medio de transporte Cary y Blair sin la tórula, 1-2 ml. del aspirado.

Volver a colocar la tórula.

RECOLECCION DE DEPOSICION EMITIDA:

El paciente debe emitir la deposición en un recipiente muy limpio, desde el cual se recolecta, con la tórula de algodón, la fracción de deposición que muestra mayor alteración (sangre, pus, mucosidad).

Colocar la tórula en el medio de transporte.

NUMERO DE MUESTRAS:

Se deben tomar 2 a 3 muestras de deposición en tiempos diferentes. Enviar juntas al laboratorio.

Para estudio de portadores, se deben tomar 3 a 4 muestras seriadas (en días diferentes)

TRANSPORTE:

Las muestras se mantienen y se transportan a temperatura ambiente, en medio

de transporte Cary y Blair.

ENTREGA DE RESULTADOS: A las 72 horas.




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EXPECTORACION

INDICACIONES:

Paciente con neumonía

Enfermedad bronquial crónica reagudizada.

TOMA DE MUESTRA:

1. Paciente debe lavarse los dientes y realizar enjuagues con agua corriente, para limpiar la cavidad oral.

2. Obtener el esputo tras una expectoración profunda, luego de un esfuerzo de tos, preferentemente matinal.

3. El kinesiólogo o enfermera debe asistir al paciente durante la obtención de ésta. La muestra debe provenir del sector bajo del tracto respiratorio.

4. La saliva no sirve para realizar este estudio. 5. De no producirse expectoración espontánea, puede inducirse el esputo con

nebulizaciones con suero fisiológico. 6. Obtener muestra previo inicio de la terapia antimicrobiana. 7. Depositar muestra en placa Petri estéril, diseñada para este propósito, o en

frasco de boca ancha tapa rosca estéril.

VOLUMEN: De 2 a 10 ml. si es posible.

TRANSPORTE:

La muestra debe enviarse de inmediato al Laboratorio. No debe demorar

más de dos horas en llegar al laboratorio. Transportar placa dentro de una unidad

de transporte térmico.

NOTA: Una muestra representativa debe presentar al Gram las siguientes

características, en cuyo caso contrario el examen se debe repetir:

≥ 25 Polimorfonucleares por campo. ≤ 10 Células epiteliales por campo.

HORARIO DE RECEPCION: De 8.00 a 12.00 horas, de Lunes a Viernes.

ENTREGA DE RESULTADOS: A LAS 48 – 72 hrs.




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CULTIVO FARINGEO.

INDICACIONES:

El agente principal de faringitis es Streptococcus pyogenes.

El estudio de Neisseria meningitidis se realiza con propósitos epidemiológicos.

El estudio de faringitis gonocócica debe ser solicitada en forma específica por el médico.

El estudio de Corynebacterium difhtheriae se realiza sólo cuando se solicita expresamente.

TOMA DE MUESTRA:

1. SECRECION FARINGEA.

Buena iluminación y exposición de la faringe del paciente.

Deprimir la lengua con baja lengua.

Frotar la tórula con la pared posterior de la faringe y las amígdalas tocando cualquier exudado.

Evitar tocar la lengua, úvula y pared de la boca.

2. ESTUDIO PARA CORYNEBACTERIUM DIPTHERIAE: Tomar 2 muestras con tórula, utilizando baja lengua, pasándola por el reborde de la pseudomembrana.

3. ESTUDIO PARA NEISSERIA MENINGITIDIS: Muestra nasofaríngea. Tomar la muestra con tórula, por detrás de la úvula en la porción nasal de la faringe.

4. ESTUDIO PARA N. GONORRHOEAE: Tomar la muestra con tórula como en cultivo faríngeo.

TRANSPORTE:

Enviar la tórula en medio de transporte Stuart, a temperatura ambiente,

dentro de una unidad de transporte térmica.

ENTREGA DE RESULTADOS: A las 48 – 72 hrs




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HEMOCULTIVO.

INDICACION:

Compromiso del estado general asociado a:

Fiebre > 38 ° C.

Hipotermia < 36° C.

Leucocitosis > 10.000

Granulocitopenia < 1.000 polimorfonucleares x ml.

O una combinación de ellos.

En pacientes que por su condición debilitada no responden con fiebre, guiarse por los síntomas y signos clínicos de sepsis: taquicardia, palidez, hipotensión, sudoración.

Paciente con antimicrobianos, en que se sospecha falla de tratamiento, previo al cambio de terapia.

MOMENTO DE LA OBTENCION:

Lo antes posible después de constatada el alza febril (38°)

INTERVALO DE TIEMPO:

Tomar en forma simultánea, el set de hemocultivos pero de sitios de punción diferentes. (brazo izquierdo, brazo derecho).

VOLUMEN DE SANGRE POR FRASCO Y N° DE MUESTRAS:

En adultos tomar 10 ml. de sangre por frasco, completando set de 2 muestras.

Endocarditis infecciosa : 3 frascos en 24 hrs.

Esperar hasta 24 hrs. antes de repetir un nuevo set de 3 frascos adicionales; si

los 3 frascos primeros están negativos hasta ese momento.




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1. RECIEN NACIDOS: 1 ml. de sangre por frasco completando un set de 2 frascos.

2. LACTANTES 1 MES- 1 AÑO: 1,5 ml. de sangre por frasco, completando un set de 2 frascos.

3. MAYORES DE 2 AÑOS: 2,5 ml. de sangre por frasco, completando un set de 2 frascos.

4. ADOLESCENTES: 5 – 10 ml. de sangre por frasco, completando un set de 2 frascos.

Relación sangre / caldo y tipos de frascos:

Se debe mantener una relación 1/5 a 1/10 respecto de la dilución sangre /

caldo de cultivo. Se utilizan frascos comerciales BACT ALERT.

Frascos verdes, con 40 ml. de medio de cultivo, para pacientes adultos: agregar 10 ml. sangre por frasco.

Frascos amarillos, con 20 ml. de medio de cultivo, para pacientes pediátricos, máximo de 4 ml. de sangre por frasco. Contienen partículas de carbón para inactivar antibióticos.

Ambos tipos de frascos permiten el crecimiento de bacterias aerobias,

anaerobios facultativos, hongos. Para anaerobios se necesitan frascos especiales.

TOMA DE MUESTRA:

1. Muestra tomada por personal adiestrado (enfermera), con guantes de procedimiento.

2. Seleccionar la vena periférica de más fácil acceso. 3. Lavar la extremidad elegida con agua y jabón. 4. Aplicar con tórula de algodón, alcohol 70 %, en forma concéntrica,

partiendo desde el lugar donde se va a puncionar, hacia la periferia. 5. Puncionar la vena y aspirar sangre. 6. Desinfectar la tapa frasco donde se va a inocular la sangre, con alcohol

70% 7. Pinchar la tapa de goma e inocular la sangre que se mezcla con el medio

de cultivo. No cambiar de aguja para hacer este proceso.




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TRANSPORTE:

A temperatura ambiente, como máximo 6 horas antes de incubarse en el

laboratorio.

HORARIO DE RECEPCION: Las 24 hrs. del día.


Los hemocultivos se mantienen por 5 días antes de darlos por negativos.

La excepción se da ante la sospecha de algún microorganismo fastidioso, de hongo o ante un diagnóstico de Endocarditis bacteriana, en el cual se incuban hasta 10 días.

En caso de estar positivos. Se da un informe preliminar.




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HEMOCULTIVOS CUANTITATIVOS

PROPOSITO: Detectar en forma oportuna las infecciones asociadas a catéter

venoso central, con el fin de indicar con justificación el retiro del catéter. Se basa

en el recuento diferencial de bacterias presentes en la circulación sistémica

periférica y en el catéter venoso central. No se requiere infección en el sitio de

inserción del catéter para indicar bacteriemia asociada a CVC.

Sensibilidad: > 80%

Especificidad: 94 – 100 %

INDICACIONES: A todo paciente con catéter venoso central, de más de 24 horas,

con fiebre mayor o igual a 38° C, sin otro foco infeccioso documentado.

ORDEN MÉDICA: Se debe especificar en la orden médica, cultivo de hemocultivos

cuantitativos, central y periférico.

MUESTRAS: Rotular 2 jeringas CENTRAL Y PERIFERICA.

1. Preparación de la piel para punción periférica, del mismo modo que para toma de hemocultivos.

2. Extraer 1.0 ml. de sangre por vena periférica con jeringa heparinizada. 3. Taponar jeringa.(tapones estériles) 4. Destapar catéter central. 5. Con técnica aséptica, retirar suero del catéter con una jeringa. 6. Extraer con jeringa heparinizada 1.0 ml. de sangre por el catéter central. 7. Taponar jeringa (tapones estériles) 8. Colocar 5 ml. de suero fisiológico estéril por el catéter y cerrar el circuito 9. Colocar apósitos y tela.

TRANSPORTE:

Enviar inmediatamente al laboratorio, el par de jeringas taponadas, rotuladas, a temperatura ambiente. La orden debe indicar hemocultivos cuantitativos.

Se debe acompañar de 2 hemocultivos tradicionales.




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HORARIO DE RECEPCION:

De lunes a viernes hasta las 12 hrs. AM. No enviar fuera de este horario ni en

días Sábado y festivos.

ENTREGA DE RESULTADOS: 48 – 72 horas.

INTERPRETACION:

Sin crecimiento de bacterias o menos de 5 colonias por placa: Negativo a las 72 hrs.

Si el recuento bacteriano es superior 5 a 10 veces, en el cultivo del catéter central, sobre el cultivo periférico, con crecimiento de más de 5 colonias por placa: Infección del torrente sanguíneo asociado a catéter venoso central (CVC). Se realizará identificación y estudio de sensibilidad para tratamiento antibiótico específico y es orden de retiro del catéter.

Si por el contrario, el resultado del recuento del catéter central, no es superior al recuento periférico, con más de 5 colonias por placa: Probable infección del torrente sanguíneo asociado a catéter: Interpretación según clínica y agente identificado.




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BACTEREMIA ASOCIADA A CVC.

Los hemocultivos automatizados permiten agregar un método adicional de diagnóstico de bacteriemia asociada a catéter central.

Se toma una muestra de sangre, del CVC y otra muestra de sangre periférica, según procedimiento indicado previamente.

ROTULAR: frasco 1: CVC y frasco 2: periférico.

VOLUMEN:5- 10 ml. en pacientes adultos. Hasta 4 ml. en pacientes pediátricos.

IMPORTANTE: Igual volumen en ambos frascos.

ORDEN MEDICA: Indicar Hemocultivos CVC y periférico.

TRANSPORTE: Enviar inmediatamente al Laboratorio, a temperatura ambiente.

HORARIO RECEPCION: Las 24 hrs. del día.

Se incuban en forma habitual en equipo automatizado, y si la muestra

central es positiva con más de 2 horas de diferencia con respecto a la muestra

periférica, es diagnóstico de bacteriemia asociada a CVC.




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INFECCIONES DE LA PIEL Y TEJIDO SUBCUTANEO

LESIONES SUPERFICIALES ERITEMATOSAS

ENFERMEDADES Y

SINTOMAS

MICROORGANISMOS QUE COMUNMENTE

LA CAUSAN

TOMA DE MUESTRA Y TRANSPORTE

ERISEPELA Streptococos grupo A.

(piógenes)

EXUDATIVAS: Con tórula Desde el borde de la lesión. Con limpieza previa. COSTRAS: Remover la Costra con suero fisiológico y frotar la tórula.

INFECCIONES PURULENTAS Aspirar en la zona de inflamación más aparente (bordes) con aguja y jeringa con 0.2 ml. de suero fisiológico estéril. TRANSPORTE AEROBIO:

CELULITIS Streptococcus grupo A. Staphylococcus aureus.

Anaerobios.

ERSIPELOTHRIX Erisipelothrix

insidiosa




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IMPETIGO:

Streptococcus grupo A.

Staphylococcus aureus.

Tórulas en medio de Transporte Stuart. Secreciones purulentas en medio de transporte Stuart sin tórula. Enviar dentro de unidad de transporte térmico. TRANSPORTE ANAEROBIO: En medio de transporte comercial para anaerobios dentro de unidad de transporte térmico.

FOLICULITIS:


Pseudomonas aeruginosa.

PARONIQUIA Staphylococcus

aureus. Candida spp.

PANADIZO


Virus herpes simplex.




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ULCERAS Y NODULOS

ENFERMEDADES Y

SINTOMAS

MICROORGANISMOS

QUE COMUNMENTE

LA CAUSAN

TOMA DE MUESTRA

Y TRANSPORTE

DIFTERIA CUTANEA.

Corynebacterium Diphteriae.

Toma de exudados con tòrula.

ANTHRAX. Bacillus anthracis.

Toma de exudados y heridas con tòrula. Tejidos o material contaminado con B. anthracis. Sangre. TRANSPORTE: Tórulas en medio de transporte Stuart. Tejidos en tubo estéril. Frascos de hemocultivo en caso de sangre. Enviar dentro de unidad de transporte térmico.




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SENOS PARANASALES:

ENFERMEDADES Y SINTOMAS


LA CAUSAN


ACTINOMICOSIS

Actinomyces spp. Proopribacterium

propiónica.

Desinfectar la piel con

alcohol 70°.

Aspirar con aguja y jeringa desde abscesos.

Material desde biopsias.

TRANSPORTE:

En medio de transporte comercial para anaerobios dentro de unidad

de transporte térmico.

Diversos focos de infecciones

profundas o crónicas.

Staphylocccus aureus. Enterobacterias.

Pseudomonas spp.

Aspiración con aguja y jeringa

desde abscesos.

TRANSPORTE: En tubo estéril o en medio de transporte Stuart sin la tórula;

dentro de unidad de transporte térmico.




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INFECCIONES DE HERIDAS

ENFERMEDAD Y SINTOMAS


LA CAUSAN


INFECCIONES DE HERIDAS

POST OPERATORIA

Staphylococcus aureus Streptococcus Grupo A

Enterococcus Enterobacterias

Bacteroides Clostridium

-Limpieza por arrastre con suero fisiológico, luego aplicar

de la lesión. -Pus por aspiración con aguja y

jeringa. -Tejidos desde biopsias.

TRANSPORTE:

AEROBIO: Medio de transporte Stuart

Tubo estéril. ANAEROBIO:

Medio de transporte comercial para anaerobios.




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MORDEDURAS

ENFERMEDAD Y SINTOMAS


LA CAUSAN


MORDEDURAS ANIMALES

Pasteurella multocida. Streptobacillus moniliformes.

Spirillum minus.

-Limpieza por arrastre con suero fisiológico, luego aplicar tòrula

en el fondo de la lesión. -Pus, por aspiración con aguja y

jeringa.

TRANSPORTE:

AEROBIO:

Tórula en medio de transporte Stuart.

ANAEROBIOS:

En medio de transporte comercial para anaerobios.


AEROBIO: 48 - 72 Hrs. Mínimo.

ANAEROBIO: Informe preliminar a las 48 - 96 hrs.




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LAVADO BRONCO-ALVEOLAR

INDICACIONES:

Paciente con neumonía de difícil diagnóstico

Pacientes inmunodeprimidos con neumonía.

TOMA DE MUESTRA:

Debe ser tomada por un médico especialista.

TRANSPORTE:

En el mismo set de toma de muestra, de inmediato al laboratorio, sin refrigerar .

ENTREGA DE RESULTADOS: a las 48 – 72 hrs.




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LEUCOCITOS FECALES

TOMA DE MUESTRA:

1.- Deposición por emisión espontánea.

2.- Deposición obtenida por sonda rectal.

En ambos casos de deposición se deposita en una frasco de polietileno

limpio, entregar a laboratorio.

LIMITACIONES:

FALSOS NEGATIVOS: deficiente toma de muestra.

FALSOS POSITIVOS: dermatitis del pañal.

COLITIS ULCEROSA: leucocitos abundantes.

ENTREGA DE RESULTADOS: Durante el día.




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LIQUIDO ASCITICO

GENERALIDADES:

Liquido peritoneal: líquido ubicado entre el peritoneo parietal y visceral (cavidad

abdominal, peritoneal)

Ascitis: acúmulo anormal de líquido en la cavidad abdominal.

Peritonitis: inflamación del peritoneo.

Peritonitis primaria: peritonitis bacteriana sin evidencia de ruptura de víscera.

PBE: peritonitis bacteriana espontáneas Ascitis (cirrosis).

TOMA DE MUESTRA:

Por punción y aspiración de líquido de cavidad abdominal. -Personal entrenado -Técnica aséptica

NUMERO DE MUESTRAS:

1. Tubo con Heparina, tapa verde: para análisis bioquímico (glicemia, proteínas, otros ). 2. Tubo con EDTA, tapa lila: para recuento celular y diferencial. 3.-Tubo estéril para microbiología, ò tubo tapa roja estéril, sin anticoagulante:3-5ml para gram y cultivo.. 4. Inoculación directa en frasco de hemocultivo pediátrico (amarillo), con 1-3 ml de líquido. TRANSPORTE: -Transportar lo antes posible al Laboratorio, a temperatura ambiente.

HORARIO RECEPCION:

Durante las 24 horas.


A las 48 horas, mínimo.




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LIQUIDO ARTICULAR O SINOVIAL

INDICACIONES:

Fundamentalmente para evaluar las alteraciones del líquido sinovial en las artritis.

La inflamación de estas articulaciones se puede producir por:

Agente físico o mecánico (traumatismos, gota)

Agentes químicos (hemofilia)

Artritis supuradas o sépticas

Artritis por reacciones inmunológicas o autoinmunes

Artritis reumatoide y fiebre

TOMA DE MUESTRA: Se realiza por punción articular:

Personal entrenado

Técnica aséptica

Anestesia local

Procesar antes de 4 horas de obtenido

NUMERO DE MUESTRAS:

1. Tubo con Heparina, tapa verde: para análisis bioquímico. 2. Tubo con EDTA, tapa lila: para recuento celular y diferencial. 3. Tubo estéril para microbiología o tubo tapa roja estéril, sin anticoagulante: 3 a 5 ml, para gram y cultivo.

4. Inoculación directa en frasco de hemocultivo pediátrico (amarillo) con 1-3

ml. de líquido.

TRANSPORTE:

Piedra angular del diagnóstico etiológico:

Antes de iniciar antibióticos

Transporte y procesamiento rápido

Sensibilidad de Gram y Cultivo: 60-90%.

Transportar las muestras tomadas, lo más rápido posible al laboratorio, a

temperatura ambiente.




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HORARIO RECEPCION: Durante las 24 horas.

ENTREGA DE RESULTADOS: A las 48 horas, mínimo.




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CULTIVO LÍQUIDO CEFALORRAQUIDEO (LCR)

INDICACIONES:

-meningitis infecciosa -poliomielitis -hemorragias meníngeas -LES -encefalitis -sarcoidosis -neuropatías -vasculitis -hipertensión intracraneal benigna -sífilis nerviosa -epilepsia -hidrocefalia normo-tensa -demencia de origen metabólico -síndrome Guillain Barre -esclerosis múltiple y sus variantes -personas VIH + -linfoma, leucemia y otro tipo de tumores que involucran al SNC.

TOMA DE MUESTRA:

Muestra obtenida por un médico entrenado en la técnica de punción lumbar.

Técnica aséptica.

PROCEDIMIENTO:

Limpieza por arrastre de la región lumbar del paciente con agua y jabón.

Limpiar la piel con tórula de algodón impregnada con alcohol 70% mediante movimientos concéntricos que van desde el lugar donde se realizará la punción, hacia afuera.

Proceder a la punción lumbar con técnica aséptica (campo estéril y equipo de profesionales con vestimenta de protección estéril.

Recolectar el LCR en frascos estériles plásticos con tapa rosca (citoquímico, bacteriológico y TBC cuando se sospeche).

1.-Tubo con Heparina, tapa verde: para análisis bioquímico. (Glucosa,

y proteínas) .

2.- Tubo con EDTA, tapa lila: para recuento celular y diferencial.

3.- Tubo estéril para microbiología,o tubo tapa roja estéril sin anticoa-

gulante, 1-2 ml.: para gram y cultivo.

4.- Tubo estéril sin anticoagulante para ADA (TBC).

5.- Tubo estéril para cultivo Koch sin anticoagulante.




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Inocular además, 1 frasco de hemocultivo pediátrico (amarillo), con 1

ml. de LCR. si es posible.

Lo adecuado para el estudio bacteriológico es de 2 ml. de LCR.

En aquellos casos en que se obtiene escasa cantidad de muestra, el clínico debe indicar orden, cuál de los estudios que se realizan con el LCR reviste mayor importancia.

Otra forma de tomar muestra de líquido cefalorraquídeo es por drenaje ventricular y por punción de fontanela.

TRANSPORTE:

Se debe enviar a la mayor brevedad posible al laboratorio, en un tubo estéril plástico tapa rosca, a temperatura ambiente (no refrigerar), junto con el frasco de hemocultivo.

Transportar dentro de una unidad de transporte térmico.

ENTREGA RESULTADOS: A las 48 hrs. mínimo.

NOTA: Si se envía frasco de hemocultivo con LCR ,no deje de enviar además LCR

en tubo tapa roja para gram directo y siembra de la muestra.




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LIQUIDO PERITONEAL

En el caso de:

Peritonitis bacteriana 2ª: perforación víscera (apendicitis, trauma).

Peritonitis 3ª: complicación de peritonitis secundaria.

TOMA DE MUESTRA:

Se realiza durante el intra-operatorio con jeringa estéril.

Personal entrenado

Técnica aséptica

Recolectar muestra, en tubo de polietileno, tapa rosca estéril o tubo tapa roja, sin

anticoagulante, para estudio microbiológico, de 3 a 5 ml es suficiente para realizar

el estudio de gram y cultivo.

No se recomienda inocular frasco de hemocultivo, ya que este tipo de muestras

viene con una carga bacteriana alta.

TRANSPORTE:

-Transportar lo antes posible al Laboratorio, a temperatura ambiente, dentro de

una unidad de transporte térmico.


ENTREGA DE RESULTADOS: A las 48 horas, mínimo.




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LIQUIDO PLEURAL

INDICACIONES:

Todo paciente que presente signos clínicos y/o radiológicos de derrame pleural de etiología no precisada.

TOMA DE MUESTRA:

Debe ser realizada por un médico entrenado en la técnica de toracentesis, la

punción aspirativa debe realizarse bajo rigurosa técnica aséptica. Se debe

recolectar:

1. Tubo con Heparina, tapa verde: para análisis bioquímico (glicemia, proteínas, otros)

2. Tubo con EDTA, tapa lila: para recuento celular y diferencial. 3. Tubo estéril para microbiología, o tubo tapa roja estéril, sin anticoagulante:

3-5ml, para gram y cultivo. 4. Inoculación directa en frasco de hemocultivo pediátrico (amarillo), con 1-3

ml de líquido. 5. Tubo para ADA (TBC) con citrato. 6. Tubo estéril para cultivo de Koch.(TBC)

TRANSPORTE:

Transportar lo antes posible al Laboratorio, a temperatura ambiente, dentro de una

unidad de transporte térmico.






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CULTIVO NASAL

Portación nasal de Staphylococcus aureus está presente en 20 – 25 % de

individuos sanos en la comunidad y con frecuencia en el ambiente hospitalario

aumenta, de modo que solo se tomarán muestras del personal del hospital en

caso de un brote intrahospitalario bien documentado, que permita establecer que

se trata de la misma cepa, indicado por comité IAAS.

MUESTRA: Secreción nasal.

TOMA DE MUESTRA:

Introducir tórula humedecida en solución salina y rotar en el vestíbulo de ambas fosas nasales (tabique y cara interna de aletas nasales)

TRANSPORTE:

Tórula en medio de transporte Stuart , a temperatura ambiente.





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MYCOPLASMA HOMINIS Y UREAPLASMA UREALYTICUM

Se envía información para el cultivo, identificación y estudio de sensibilidad de

micoplasma urogenitales. Para el diagnóstico de micoplasma urogenitales se

realiza:

Cultivo

Identificación

Recuento

Test de sensibilidad

TOMA DE MUESTRA:

Para muestras vaginales, friccionar bien la mucosa para recoger la mayor cantidad de células posibles.

Efectuar la toma de muestra antes de cualquier antibioterapia.

Se debe aplicar técnica para evitar las contaminaciones por otras bacterias.

Después de tomar la muestra, colocar inmediatamente la tórula de DRALON en el frasco R 1 (cortar con tijeras)

Enviar el frasco R 1 al laboratorio. Identifica: Micoplasma hominis, Ureaplasma urealyticum.

ANTIBIOTICOS A ESTUDIAR:

Doxicilina Ofloxacina Claritromicina Azitromicina

Eritromicina Tetraciclina Ciprofloxacino

TRANSPORTE:

-Transportar lo antes posible al Laboratorio, a temperatura ambiente, dentro de

una unidad de transporte térmico.

Informe de resultados: A las 48 horas.

Muestras diarias máximas a enviar al laboratorio: 2 muestras hasta las 14 horas,

de lunes a jueves (excepto festivos).




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CULTIVO OCULAR

GENERALIDADES:

1. Muestra precoz, tomada en la forma más aséptica posible y antes de la aplicación de antimicrobianos.

2. La actividad antimicrobiana de los anestésicos tópicos usados pueden interferir con el cultivo.

MUESTRA:

SECRECION OCULAR

RASPADO CONJUNTIVAL

TOMA DE MUESTRA:

Tomar la muestra para cultivo antes de la aplicación de anestésico típico.

Tomar la muestra con extremo cuidado, con la ayuda de otra persona que inmovilice la cabeza del paciente.

Obtener la secreción con tórula estéril del fondo de saco inferior en el ángulo interno del ojo del extremo interior del párpado, previo aseo ocular con suero fisiológico.

Rotar la tórula suavemente para que toda la superficie del algodón se empape en la secreción.

TRANSPORTE:

Introducir la tórula en el medio transporte Stuart y mantener a temperatura ambiente.





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CULTIVO OTICO

Fluido del oído medio obtenido por Timpanocéntesis ( no es un procedimiento de rutina)

Secreción del conducto auditivo externo.

TOMA DE MUESTRA:

1. TIMPANOCENTESIS: La muestra debe ser tomada por un Otorrinolaringólogo.

2. SECRECION CONDUCTO AUDITIVO EXTERNO:

Aseo cuidadoso de la piel con suero fisiológico para disminuir posibilidades de arrastrar bacterias presentes normalmente en esta zona.

Tomar con una tórula fina llegando hasta las cercanías del tímpano.

Dirigir la tórula en sentido oblicuo de atrás hacia adelante y de abajo hacia arriba.

TRANSPORTE:

Cultivo aerobio: Transportar a temperatura ambiente en medio Stuart.

Cultivo anaerobio: Transportar en medio anaerobio comercial, a temperatura

ambiente.

ENTREGA DE RESULTADOS: A las 48 horas mínimo.




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ROTAVIRUS Y ADENOVIRUS (Por Enzimoinmunoensayo) en deposiciones.

Rotavirus es el virus que más frecuentemente produce diarrea en los niños

y se trasmite por contacto con alimentos, manos u objetos contaminados por

deposiciones de personas infectadas. Se presenta en forma más grave en

menores de 2 años y se cree que a los 3 años todos los niños ya han tenido

contacto con el virus.

Adenovirus, corresponden a un grupo de virus que causan diferentes tipos

de enfermedades en el hombre. La mayoría de ellos producen infecciones

respiratorias, y otros, menos frecuentemente, infecciones gastrointestinales.

Pueden afectar a personas de cualquier edad aunque es más frecuente en los

niños. Se presentan durante todo el año con un discreto ascenso a fines del

invierno, primavera y principios del verano.

TOMA DE MUESTRA:

1. Deposición por emisión espontánea 2. Deposición obtenida por sonda rectal. 3. Depositar en caja o frasco plástico limpio entregada por laboratorio. 4. La muestra para leucocitos fecales sirve además para pesquisa de rotavirus.,

si la cantidad es de aproximadamente de 2 ml. de deposición líquida o una porción de 1 – 2 gramos de deposición sólida.

TRANSPORTE:

Llevar al Laboratorio, en caja o frasco plástico a temperatura ambiente.





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CULTIVO SENOS PARANASALES

MUESTRA:

Aspirado obtenido por punción de los senos paranasales.

TOMA DE MUESTRA:

La muestra debe ser obtenida por otorrinolaringólogo.

Limpiar la mucosa nasal en el punto de la aspiración para eliminar microorganismos contaminantes.

Obtener el aspirado por punción aséptica con jeringa.

CULTIVO AEROBIO:

Depositar la muestra en medio de transporte Stuart y enviar a temperatura ambiente.,

ENTREGA DE RESULTADOS: 48 horas mínimo.

CULTIVO ANAEROBIO:

Enviar en medio de transporte comercial para anaerobios, a temperatura ambiente.,


Informe preliminar a las 48 – 96 Horas.




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CULTIVO TEJIDOS, BIOPSIAS y ABSCESOS.

El examen microbiológico de tejidos obtenidos por cirugía o muestras de

biopsias se consideran importantes, porque este tipo de muestras pueden

representar al proceso patológico entero.

Las muestras quirúrgicas van a depender del sitio anatómico, del tipo de

enfermedad, como también del cuidado del cuidado ejercitado durante el corte

quirúrgico y dela información médica, lo que ayudará a buscar el agente

etiológico.

TOMA DE MUESTRA:

Debe ser realizada por profesional idóneo.

Cuando la lesión es grande o numerosa deben tomarse varias muestras desde diferentes sitios.

En casos de escaras, deben ser removidas antes de realizarse la biopsia y recolectar al menos 1 gr. de tejido.

1. TEJIDOS BLANDOS: Extraer la muestra con aguja y jeringa cuando la lesión permita la incisión y drenaje, o un trozo de tejido obtenido con técnica aséptica.

2. MUESTRAS DE TEJIDOS POSTMORTEM: limitado para órganos específicos en el cual se sospecha la infección.

3. MUESTRAS DE AUTOPSIA: obtener una porción grande de tejido con al menos, una superficie serosa o capsular intacta.

4. ABSCESOS: debe incluir una muestra del contenido líquido interno como también una porción de las paredes. Extraer con aguja y jeringa.




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TRANSPORTE AEROBIO:

Las muestras de biopsias y / o tejidos se colocan dentro de un frasco estéril de boca ancha.

Si la muestra es pequeña o escasa, colocar suero fisiológico.

En casos de abscesos colocar en tubo estéril o en medio de transporte Stuart sin la tórula.

. TRANSPORTE ANAEROBIO:

Enviar en medio de transporte comercial para anaerobios, a temperatura ambiente.

ENTREGA DE RESULTADOS: 48 hrs. mínimo




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MUESTRAS DEL TRACTO GENITAL FEMENINO.

SITIO

ANATOMICO MICROORGANISMOS MUESTRA RECOLECCION DE MUESTRA

VULVA Haemophilus ducreyi. Aspirado ó tórula

TRANSPORTE 1.- irrigar con 0,5 ml. de suero

fisiológico y aspirar. 2.-Tomar muestra desde la

lesión con tórula humedecida con suero fisiológico.

GLANDULA DE

BARTHOLINO

Neisseria gonorrhoeae

C. trachomatis. Bacterias aerobias

y anaerobias. U.urealyticum.

Aspirado de la glándula.

Aspirar el absceso

con aguja y jeringa, previo aseo genital.

CULTIVO AEROBIO: Enviar en medio de transporte Stuart.

CULTIVO ANAEROBIO:

En medio de transporte comercial.

VAGINA

Trichomonas vaginalis.

Candida albicans. Gardnerella vaginalis.

Streptococcus Grupo B.

Secreción vaginal.

1.-Realizar aseo genital segùn normativa.

2.-Colocar espéculo sin lubricante. 3.-Introducir una sonda a través de la vagina,

conectada a una jeringa que contenga 2 ml. de

suero fisiológico. 4.-Hacer lavado vaginal con el suero fisiológico. 5.-Colocar el producto

del lavado en tubo estéril.




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VAGINA

Listeria monocytogenes. Tórula vaginal

1.-Realizar aseo genital según normativa

2.-Tomar la muestra con tórula de

la mucosa vaginal.

3.-Enviar en medio de transporte Stuart.

CERVIX Neisseria gonorrhoeae Tórula en medio de transporte Stuart.

1.Realizar aseo genital según normativa.

2.Limpiar cérvix de secreción vaginal y mucus.

3.Usar espéculo sin lubricante. 4.Tomar muestra de exudado endocervical haciendo rodar la

tórula.

ENDOMETRIO

Bacterias aerobias y

anaerobias. C.trachomatis.

Aspirado tórula

Aspirado transcervical a través

de cateter. Tórula en cirugía en medio

de transporte Stuart.

TROMPAS DE FALOPIO

Neisseria gonorrhoeae.

C. trachomatis. bacterias aerobias y

anaerobias.

Aspirado tórula

La toma de muestra se hace en la cirugía.

LIQUIDO AMNIOTICO

Bacterias aerobias y anaerobias.

Líquido amniótico

Amniocéntesis. Catéter intrauterino.

Tórula desde cesárea en medio de transporte Stuart.

NOTA: Los aspirados para cultivo aerobio se pueden transportar en medio Stuart sin la

tórula. Para cultivo anaerobio utilizar medio comercial anaerobio.




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MUESTRAS DEL TRACTO GENITAL MASCULINO

SITIO ANATOMICO

MICROORGANISMO

MUESTRA

RECOLECCION DE MUESTRA

Y TRANSPORTE

PROSTATA:


Escherichia coli. Enterobacter spp.

Klebsiella spp. Proteus spp. Serratia spp.

Pseudomonas spp. Enrerococcus.

Staphylococcus Saprophyticus.

Post masaje prostático

de secreción uretral

tomada por urólogo.

Cultivo de

semen

Masajear próstata a

través del recto. Colocar líquido en tubo

estéril o con tórula en medio de transporte Stuart.

Colocar en tubo estéril

ABSCESO PROSTATICO

Staphylococcus aureus

Post masaje prostàtico Secreciòn

uretral tomada por

urólogo.

Idem al anterior

EPIDIDIMO


Chlamydia trachomatis.

Enterobacterias Pseudomonas spp.

Cocaceas gram positivas.

Secreción uretral

Orina de primera micción.

Cultivo de semen

Tórula en medio de transporte Stuart.

Tubo estéril.

TESTICULAR (ORQUITIS)

Enterobacterias. Staphylococcus spp. Streptococcus spp.

Secreción tomada con tórula en la

cirugía.

En medio de transporte

Stuart.




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URETRAL:

Chlamydia trachomatis.


Haemophilus spp. Ureaplasma urealyticum.

Secreción uretral.

Realizar aseo genital. Exteriorizar la secreción

por presión de uretra hacia Introducir tórula de

DRALON 2 cms. Rotar tórula.

Colocar en medio de transporte.




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UROCULTIVO.

INDICACIONES:

1. Sospecha ITU: Disuria, hematuria, orinas turbias, mal olor. 2. Síndrome febril en estudio. 3. Examen pre-operatorio. 4. Previo procedimiento invasivo urológico.

TOMA DE MUESTRA:

Tomar la primera micción de la mañana. Si no es posible, dejar permanecer la orina en la vejiga el mayor tiempo posible para aumentar el número de microorganismo para volumen.(> 4 horas)

La orina es un líquido estéril, pero bajo ciertas condiciones puede contaminarse con flora de la uretra, próstata o periné.

ORINA DE 2° CHORRO:

Este método depende de la edad, sexo y habilidad del paciente para cooperar. Debe instruirse al paciente en forma verbal y escrita (pacientes que se les da hora) para tomar la muestra.

Debe ser tomada por personal adiestrado.

TOMA DE MUESTRA PARA PACIENTES FEMENINAS:

Lavarse las manos con agua y jabón, enjuagarse y secar con toalla nova.

Realizar aseo genital: con una tórula de algodón con jabón, limpie los labios mayores por separado, con un solo movimiento de arrastre de arriba hacia abajo. Separe los labios mayores con el dedo índice y pulgar y limpie en la misma forma los labios menores y vestíbulo.

Enjuagar con agua tibia usando el resto de las rótulas de algodón.

Colocar un tapón de gasa estéril en la vagina.

Orinar una cantidad pequeña en el baño y después recolectar la orina restante en un tubo estéril o frasco. Cerrar evitando el contacto con dedos, genitales externos o ropa.

Sacar tapón vaginal y eliminar.

Enviar antes de una hora al laboratorio.




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TOMA DE MUESTRA PARA PACIENTES MASCULINOS:

Lavarse las manos con agua y jabón, enjuagar y secar con toalla nova.

Lavado: retrae el prepucio, limpiar con tórula de algodón y jabón prolijamente con movimiento de arrastre.

Enjuagar con agua tibia y secar con tórula de algodón.

Orinar: el primer chorro se elimina: recolectar la muestra de orina restante directo al tubo estéril.

Cerrar el tubo.

CATETER DE PERMANENCIA PROLONGADA (PUNCION):

Desinfectar sonda con una tórula de algodón con alcohol 70 °.dejando que se evapore.

Puncionar directamente el catéter con aguja en extremo distal de la sonda.

Colocar la orina aspirada en un frasco o tubo estéril

CATETERIZACION:

Obtener orina por método de cateterización de la vejiga con técnica aséptica.

No se recomienda rutinariamente por el riesgo de introducir bacterias a la vejiga.

Indicar en la orden de laboratorio muestra tomada por catéter.

PUNCION VESICAL:

Obtenida por técnica aséptica por médico.

Indicar en la orden: “muestra por punción”.




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TRANSPORTE:

En el mismo tubo o recolector con orina, enviar antes de 1 hora al laboratorio.

Transportar a temperatura ambiente, dentro de una unidad de transporte térmico.

ENTREGA DE RESULTADOS: A las 24 – 48 horas.




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VIRUS RESPIRATORIOS POR IFI.

Virus respiratorio Sincicial

Adenovirus

Parainfluenza 1- 2- 3

Influenza A

Influenza B

La actividad más importante desarrollada por la sección de

inmunofluorescencia es la determinación de infecciones por virus respiratorios, los

cuales están asociados a infecciones respiratorias agudas del tracto respiratorio

bajo y representan una de las principales causas de hospitalización en menores

de dos años.

Las infecciones respiratorias agudas bajas ocupan el primer lugar en la tasa

de mortalidad entre el mes y los doce meses y el segundo lugar desde el año a los

cuatro años de vida. La mortalidad se incrementa ante la presencia de factores de

riesgo como displasia broncopulmonar en prematuros, cardiopatías congénitas,

inmunosupresiones, etc.

Los agentes etiológicos asociados con mayor frecuencia a infecciones

respiratorias agudas bajas son los virus respiratorios, principalmente el virus

sincicial respiratorio, adenovirus y parainfluenza. El adenovirus es el agente

etiológico de mayor gravedad con una mortalidad de hasta 10% con secuelas

como bronquiectasias, bronquiolitis obliterante o fibrosis pulmonar.

TOMA DE MUESTRA: ASPIRADO NASOFARINGEO

Muestra tomada por profesional idóneo.

Muestra óptima es el aspirado nasofaríngeo.




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MATERIALES. UNA BANDEJA CON:

1. Tubo estéril, provisto de doble entrada. 2.- Una sonda estéril para aspiración (nelatón N° 8) 3.- Gradilla para tubos en cubeta con baño de hielo. 4.- Bomba de vacío. 5.- Un par de guantes estériles.

PROCEDIMIENTO:

- Lavarse las manos - Colocarse guantes - Conectar el tubo a la sonda de aspiración y al sistema de aspiración. - Introducir la sonda sin aspirar, por una fosa nasal hasta la nasofaringe y retirar la sonda aspirando. - Repetir el procedimiento en la otra fosa nasal. - Aspirar un volumen aproximado de 6 – 8 ml. de solución buffer pH 7.2. frío, a través del tubo - Cambiar la tapa del tubo colectar. - Enviar al laboratorio con la orden de examen. La muestra debe permanecer todo el tiempo hasta la llegada al laboratorio, en baño de hielo. - Se deben enviar inmediatamente. TRANSPORTE:

La muestra debe ser transportada al laboratorio en tubo plástico, estéril, con tapa rosca, con 6-8 ml. de solución buffer pH 7.2, con unidad refrigerante, dentro de una unidad de transporte térmico.

Enviar de inmediato.

HORARIO DE RECEPCION : hasta las 8:30 horas.





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BORDETELLA POR IFD.

Una de las actividades de la sección de inmunofluorescencia es la

determinación de infecciones por Bordetella pertussis, patógeno exclusivamente

humano, agente etiológico de la coqueluche o tos convulsiva, enfermedad

endémica con ciclos epidémicos cada tres o cuatro años. Produce una infección

respiratoria aguda, grave, altamente contagiosa, de declaración obligatoria cuyas

manifestaciones clínicas dependen de la edad del paciente, el estado

inmunológico, nutricional y que afecta mayoritariamente a los niños menores de un

año de edad.

La transmisión de la enfermedad ocurre de persona a persona a través de

aerosoles o gotas de secreción de un individuo infectado. Luego de un período de

incubación en general de siete días comienza la fase catarral que dura de una a

dos semanas y cuya sintomatología puede confundirse con otras infecciones

respiratorias. Esta es la etapa más contagiosa de la enfermedad. La siguiente fase

es la paroxística que dura entre tres y seis semanas, presentándose con accesos

de tos, estridor inspiratorio y vómitos después de la tos. En niños pequeños

pueden no desarrollarse paroxismos ni estridor pero pueden presentar cianosis,

apnea y muerte súbita. El último período es el de convalecencia que puede llegar

a durar varios meses.

TOMA DE MUESTRA: ASPIRADO NASOFARINGEO

Muestra tomada por profesional idóneo.

Muestra óptima es el aspirado nasofaríngeo.




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MATERIALES. UNA BANDEJA CON:

1. Tubo estéril, provisto de doble entrada.

2.- Una sonda estéril para aspiración (nelatón N° 8)

3.- Gradilla para tubos en cubeta con baño de hielo.

4.- Bomba de vacío.

5.- Un par de guantes estériles.

PROCEDIMIENTO:

- Lavarse las manos

- Colocarse guantes

- Conectar el tubo a la sonda de aspiración y al sistema de aspiración.

- Introducir la sonda sin aspirar, por una fosa nasal hasta la nasofaringe y

retirar la sonda aspirando.

- Repetir el procedimiento en la otra fosa nasal.

- Aspirar un volumen aproximado de 6 – 8 ml. de suero fisiológico, a través

del tubo colector para arrastrar toda la secreción.

- Cambiar la tapa del tubo colectar.

- Enviar al laboratorio con la orden de examen. La muestra debe permanecer

todo el tiempo hasta la llegada al laboratorio, en baño de hielo.

- Se deben enviar inmediatamente.

TRANSPORTE:

La muestra debe ser transportada al laboratorio en tubo plástico, estéril, con tapa rosca, con 6-8 ml. suero fisiológico, con unidad refrigerante, dentro de una unidad de transporte térmico.

Enviar de inmediato.




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La recepción de las muestras se realizara en jornada normal entre las

8:00am a las 8:30pm de lunes a viernes; durante campañas de invierno se

recepcionarán las muestras en el mismo horario de jornada normal de lunes a

domingos.

Cada muestra para ser recepcionada debe venir con su respectiva orden y

rotulada en forma legible, bien sellada y como punto crítico que traiga una buena

muestra de secreción nasofaríngea; muestras que no traigan una buena muestra,

mal rotuladas o mal selladas deben ser devueltas al servicio de origen.





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BIBLIOGRAFIA.

Ulloa, Valenzuela, Pefaur, Martínez. Manual de Procedimientos de Muestras Clínicas para diagnóstico bacteriológico. 1995 Santiago.

Lennette, Balows, Hauster y Shadomy. Manual de Microbiología Clínica. 4ta. Edición 1991, Washington D.C.

Procedimientos técnicos de Laboratorio Clínico. Vol. 1 Instituto Salud Pública, 1994.

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