PLAN DE FORMACION ESPECIALIDAD DE ANALISIS CLINICOS

HOSPITAL GENERAL UNIVERSITARIO DE ALBACETE

1

INDICE: 1. Denominación de la especialidad. 1.1. Definición de la especialidad. 1.2. Contenidos específicos. 1.3. Objetivos generales de la formación. 1.4. Contenido de la especialidad. 1.5. Modos de actuación. 1.6. Objetivos teóricos. 1.7. Actividades. 2. Rotaciones previstas durante la especialidad. 2.1. Rotaciones dentro del Servicio de Análisis Clínicos. 2.1.1. Sección de Urgencias: tres meses. 2.1.2. Sección de orinas de rutina y CERM: un mes. 2.1.3. Sección de analizadores: tres meses. 2.1.4. Sección de hormonas, marcadores tumorales y fármacos: cuatro meses. 2.1.5. Sección de proteínas y alergología: cuatro meses. 2.1.6. Sección de orinas especiales, líquidos biológicos y fertilidad: cuatro meses. 2.1.7. Sección de inmunología y autoinmunidad: cuatro meses. 2.1.8. Laboratorio del Centro de especialidades de Almansa: dos meses 2.2. Servicio de Hematología y Hemoterapia. 2.2.1. Sección de hematología: dos meses. 2.2.2. Sección de hemostasia: dos meses. 2.2.3. Sección de hemoterapia: un mes 2.3. Servicio de Microbiología y Parasitología: once meses. 2.3.1. Sección de procesamiento de muestras 2.3.2. Sección de urocultivos, coprocultivos y parasitológicos. 2.3.3. Sección de respiratorio. 2.3.4. Secciones de hemocultivos, exudados, líquidos biológicos, enfermedades de transmisión sexual y mico1ógicos. 2.3.5. Sección de serología microbiana. 2.4. Comisión de Servicios: tres meses 2.5. Rotación por F.I.V.: dos meses. 2.6. Rotación libre por las secciones de Análisis Clínicos donde se hayan introducido técnicas novedosas que en su momento no estaban incorporadas al trabajo de rutina del Laboratorio. 3. Formación docente e investigadora 3.1. Sesiones realizadas en el servicio. 3.2. Asistencia a cursos y congresos. 3.3. Objetivos de investigación

2

4. Guardias de la especialidad. 4.1. Contenido y número de guardias. 4.2. Objetivos de las guardias 5. Normativa referente a vacaciones. 6. Evaluación. 6.1. Evaluación periódica 6.2. Evaluación anual.

3

1. INTRODUCCION: DENOMINACION DE LA ESPECIALIDAD: Análisis Clínicos DURACION: 4 años. LICENCIATURAS PREVIAS: Medicina, Farmacia, Ciencias Biológicas, Ciencias Químicas. La especialidad de Análisis Clínicos se fundamentará en aquellas actuaciones que, a través de métodos diagnósticos analíticos, pruebas funcionales y/o de laboratorio y su correlación fisiopatológica, ayuden al diagnóstico, pronóstico, terapéutica médica y prevención de la enfermedad. Es competencia del especialista la gestión integral del laboratorio de Análisis Clínicos. 1.1. DEFINICION DE LA ESPECIALIDAD: Se entiende por Análisis Clínicos el área de las ciencias básicas de aplicación al diagnóstico, pronóstico, terapéutica y prevención de la enfermedad. Los Análisis Clínicos son la base común de las siguientes especialidades: Hematología y Hemoterapia, Bioquímica Clínica, Microbiología y Parasitología, Inmunología y Genética. Su campo de acción será la asistencia primaria y secundaria de la actual estructura sanitaria. A nivel de la asistencia terciaria su actuación se reducirá a áreas concretas. 1.2. CONTENIDOS ESPECIFICOS: Los contenidos teórico-prácticos se ajustarán a los incluidos en las ciencias de acuerdo a los siguientes apartados:

-Conocimientos básicos del Laboratorio de Análisis Clínicos. -Bioquímica Clínica. -Hematología y Hemoterapia. -Microbiología y Parasitología. -Inmunología. -Genética. -Gestión del Laboratorio.

1.3. OBJETIVOS GENERALES DE LA FORMACIÓN: Al finalizar el periodo de formación el residente de Análisis Clínicos debe tener: -Conocimiento adecuado de fisiología y fisiopatología y de los cambios bioquímicos que se producen en la enfermedad. -Conocimiento adecuado en las áreas de hematología, microbiología y parasitología, inmunología y genética. -Conocimiento de las aplicaciones e interpretación de las determinaciones analíticas en la medicina clínica. Estar familiarizado con los métodos y técnicas analíticas y ser capaz de asimilar futuras innovaciones.

4

- Ser competente en la dirección y administración de un Servicio de Análisis. -Conocer los principios básicos y técnicas de la investigación científica, desde el diseño experimental al tratamiento y presentación de datos. -Estar capacitado para la docencia y transmisión de conocimientos a otros graduados en formación y personal técnico del laboratorio- 1.4. CONTENIDO DE LA ESPECIALIDAD: Aplicación de los conocimientos teóricos y prácticos de la Bioquímica Clínica, la Microbiología Médica, la Hematología Analítica, la Inmunología y la Fisiopatología a la prevención de la enfermedad y la patología humana. Ha de hacerse hincapié en la correlación clínico-analítica, mediante el conocimiento fisiopatológico de las pruebas adecuadas a cada enfermedad. 1.5. MODOS DE ACTUACION: -Obtención de las muestras biológicas y su manipulación. -Estudio analítico de los especimenes biológicos, mediante las técnicas adecuadas. -Interpretación e informe diagnóstico de los datos obtenidos. -Desarrollo de metodologías analíticas para la promoción de nuevas exploraciones, así como para la Investigación Clínica Aplicada. 1.6. OBJETIVOS TEORICOS: Es imprescindible alcanzar unos objetivos teóricos mínimos en cada rotación. Estos deberán incluir lo referente a las determinaciones efectuadas en el laboratorio, así como a aquellos parámetros que se realicen en el laboratorio externo, por no disponer de la infraestructura necesaria. Conocimiento de las técnicas básicas empleadas en el laboratorio: técnicas espectrofotométricas, cromatografía, inmunoanálisis, electroforesis, electroquímica, microscopio... . Es imprescindible el conocimiento de la fisiopatología humana para la interpretación de los diferentes parámetros y sus aplicaciones. Estadística y Control de Calidad. Calibración y control de las técnicas empleadas en el Laboratorio clínico. Dominio de la estadística básica para su aplicación en el manejo de controles de calidad interno y externo. Valores de Referencia: unidades convencionales y sistema internacional. Cálculo de los valores de referencia: empleo de la estadística paramétrica y no paramétrica. Dirección y Gestión del laboratorio.

-Organización del laboratorio. Metas y objetivos. -Estructura e instrumentación. Valoración de costos. -Arquitectura y diseño de los laboratorios.

5

-Informatización. Conexiones on line. Gestión de informes. -Evaluación y contratación de personal. -Controles de calidad interno y externo. Homologaciones sanitarias. -Educación continuada del personal de plantilla y técnicos de laboratorio. -Seguridad biológica en el laboratorio.

CONOCIMIENTOS BASICOS DEL LABORATORIO DE ANALISIS CLINICOS:

-Métodos instrumentales y analíticos. -Obtención y conservación de muestras biológicas. Errores preanalíticos. -Estadística paramétrica y no paramétrica. Valor predictivo de las pruebas. -Niveles de decisión. Valores de referencia. Unidades de medida.

ASPECTOS ESENCIALES DE BIOQUIMICA CLINICA:

-Fisiopatología del equilibrio ácido-base. Gasometría. -Fisiopatología renal. Equilibrio hidroelectrolítico. -Fisiopatología hepática. -Fisiopatología ósea. Metabolismo fosfo-cálcico. -Fisiopatología del aparato digestivo y páncreas. -Exploración de la función muscular. -Fisiopatología del metabolismo hidrocarbonado. Diabetes. -Fisiopatología del metabolismo lipídico. -Fisiopatología del metabolismo de aminoácidos y proteínas. -Metabolismo del hierro. Biosíntesis del grupo hemo. Porfirias. -Embarazo y función fetal. -Exploración de los errores metabólicos congénitos. -Fisiopatología endocrina. Sistema tiroides, paratiroides, hipotálamohipófisis, adrenal, gonadal, gastrointestinal. -Oncología médica. Marcadores tumorales. -Análisis de líquidos biológicos: ascítico, cefalorraquídeo, pleural, sinovial, de lavado peritoneal, pericárdico, drenajes, seminal.

ASPECTOS ESENCIALES EN INMUNOLOGIA:

-Inmunidad humoral y celular. Linfocitos T, B, macrófagos y complemento. Inmunoglobulinas. Regulación de la respuesta inmune. -Inmunogenética. Complejo mayor de histocompatibilidad. HLA y enfermedad. -Hipersensibilidad. Autoinmunidad. Inmunopatología de las enfermedades sistémicas y tumorales.

ASPECTOS ESENCIALES EN GENETICA:

6

-Introducción a la genética médica. Bases bioquímicas: DNA y RNA; código genético y cromosomas. Ciclo celular. Expresividad, penetrancia y mutaciones. -Mecanismos de producción de anomalías cromosómicas estructurales y numéricas. Anomalías en autosomas y cromosomas sexuales. Anomalías cromosómicas en neoplasias humanas. Síndromes de inestabilidad cromosómica. -Diagnóstico prenatal. Consejo genético. -Citogenética de la infertilidad y esterilidad. Reproducción asistida.

1.7. ACTIVIDADES. 1.7.1. ASISTENCIALES El residente de Análisis Clinicos deberá realizar personalmente las técnicas analíticas y deberá estar implicado íntimamente en el mantenimiento preventivo de los instrumentos y en la resolución de problemas que se presenten en los instrumentos y en las técnicas analíticas. Deberá ser capaz de introducir un nuevo procedimiento analítico en la rutina de un laboratorio, tanto en sus aspectos técnicos como en lo referente a las posibles implicaciones clínicas de la nueva técnica. El residente deberá participar en todas las consultas con los médicos clínicos destinadas a la discusión, tanto de la indicación de determinadas exploraciones como de la significación clínica de la información producida por el laboratorio. 1.7.2. CIENTÍFICAS Los residentes, progresivamente, desarrollarán actividades científicas y docentes: -Trabajos de revisión bibliográfica y presentación de sesiones bibliográficas. - Realización de sesiones clínicas -Participación activa en la realización de trabajos científicos, realización y redacción de los mismos. - Participación como docentes en cursos y programas que se desarrollen en la institución.

7

2. ROTACIONES PREVISTAS DURANTE LA ESPECIALIDAD 2.1. ROTACIONES DENTRO DEL SERVICIO DE ANALISISCLINICOS: 2.1.1. SECCION DE BIOQUIMICA DE URGENCIAS: TRES MESES. OBTENCION DE ESPECIMENES BIOLOGICOS: -Sangre arterial y venosa, orina, heces y líquidos biológicos. -Anticoagulantes: elección y estudio de interferencias. -Centrifugación, separación y procesamiento de las muestras. RECEPCION DE ESPECIMENES BIOLOGICOS: -Manejo del transporte neumático. -Control de calidad preanalítico de las muestras recibidas: etiquetado correcto, anticoagulante adecuado, identificación de especímenes hemolizados, lipémicos o ictéricos y sus consecuencias, identificación de muestras contaminadas por extracción inadecuada... -Registro de volantes en el sistema informático y manejo del mismo en cuanto a búsqueda por número de historia clínica o nombre, evolución histórica de su analítica etc. PREPARACION Y CONSERVACION DE REACTIVOS, CALIBRADORES Y CONTROLES: -Preparación de reactivos, calibradores y controles. Estudio de estabilidad y conservación. -Control de calidad de los reactivos, calibradores y controles. PROCESAMIENTO DE SANGRE VENOSA: Centrifugación y análisis de parámetros bioquímicos urgentes: -Autoanalizador bioquímico: preparación de reactivos. Determinación de glucosa, urea, creatinina, calcio, proteínas en LCR, GOT, LDH, CK y CKMB, amilasa, iones sodio, potasio, proteínas en líquidos biológicos. Estudio de las patologías urgentes hepática, cardiaca, renal... - Determinación de Troponina. -Determinación de sodio, potasio, cloro y calcio iónico por métodos potenciométricos en el analizador de gases e iones. -Determinación de bilirrubina de neonatos por espectrofotometría directa. Estudio de la ictericia neonatal. -Determinación de osmolalidad en plasma. Anión gap. -Determinación de amonio en plasma.

8

Realización de hemograma urgente: recuentos de leucocitos, hematíes y plaquetas. Fórmula leucocitaria. Visualización al microscopio de las fórmulas que lo precisen. Realización de pruebas de coagulación urgente: TP, APTT, fibrinógeno, fibrinógeno real, dímero D. PROCESAMIENTO DE SANGRE VENOSA, ARTERIAL Y CAPILAR EN CONDICIONES ANAEROBIAS PARA DETERMINACION DE pH y GASES. - Electrodos de pH, PO2 y PCO2. Parámetros calculados (bicarbonato, exceso de base, porcentaje de saturación de oxígeno de la hemoglobina). Estudio del equilibrio ácido-base. - Electrodos de glucosa y lactato - Determinación espectrofotométrica de los tipos de hemoglobinas. PROCESAMIENTO DE ORINA: -Análisis elemental de orina: determinación de parámetros bioquímicos básicos. Empleo de lectores de tiras reactivas por reflexometría: determinación de pH, densidad, glucosa, proteínas, cuerpos cetónicos, bilirrubina, urobilinógeno, eritrocitos, leucocitos y nitritos. -Centrifugación y visualización del sedimento urinario (microscopía óptica): identificación de leucocitos, hematíes, flora bacteriana, levaduras, los distintos tipos de cilindros, células de descamación y cristales... -Reconocimiento de parásitos presentes en orina. -Cuantificación de iones sodio, potasio y cloro por electrodos selectivos. -Determinación de amilasa y creatinina. -Determinación de osmolalidad en orina. -Test de gestación urgente: análisis mediante tiras reactivas por enzimoinmunoanálisis cualitativo. -Determinación cualitativa de mioglobina en orina. - Determinación de drogas de abuso en orina PROCESAMIENTO DE LIQUIDOS BIOLOGICOS: -Análisis de líquidos cefalorraquídeo, pleural, pericárdico, ascítico, lavado peritoneal y sinovial. -Aspecto, recuento y fórmula. -Parámetros bioquímicos: glucosa, proteínas, cloruros, LDH, amilasa... -Análisis de cristales en líquido sinovial con el microscopio de polarización.

9

2.1.2. SECCION DE RECEPCION DE MUESTRAS, CERM Y ORINAS ELEMENTALES: UN MES. RECEPCION DE MUESTRAS Y GESTIÓN DE DATOS: -Registro de volantes en el ordenador de gestión del laboratorio. -Funcionamiento del centro receptor de muestras y emisión de informes, CERM, sistema de clasificación de muestras por lectura del código de barras SCM. Listados de trabajo e impresión de informes y etiquetas. -Distribución y preparación de muestras: centrifugación, separación y procesamiento. Almacenamiento y conservación. Atemperación y homogenización de las muestras conservadas. -Manejo de datos, obtención de estadísticas... ORINAS: SEDIMENTO URINARIO Y PARAMETROS BIOQUIMICOS BASICOS: -Determinación de parámetros bioquímicos. Lectores de tiras de orina por reflexometría (pH, densidad, glucosa, proteínas, cuerpos cetónicos, bilirrubina, urobilinógeno, eritrocitos, leucocitos y nitritos). -Visualización del sedimento al microscopio óptico: identificación de leucocitos, hematíes, flora bacteriana, levaduras, distintos tipos de cilindros, células de descamación y cristales ... Reconocimiento de parásitos que pueden aparecer en orina. - Test de gestación - Test de sagre oculta en heces por enzimoinmunoanálisis.

10

2.1.3. SECCION DE AUTOANALIZADORES: TRES MESES. -El residente debe familiarizarse con los principios teóricos de los distintos métodos analíticos utilizados para la medición de los diferentes parámetros y ser competente en la realización de los mismos. Además, será capaz de interpretarlos en su contexto fisiopatológico. -Instrumentación básica para la medida del peso (balanzas), volumen (probetas, matraces aforados, pipetas manuales y automáticas, sistemas de dosificación automática...) y pH (tiras de pH y phmetros). -Unidades de medida. -Empleo de material fungible. Sistemas de purificación del agua. AUTOANALIZADORES: Autoanalizadores de bioquímica: determinaciones bioquímicas de rutina. Técnicas espectrofotométricas y turbidimétricas. Determinación de glucosa, urea, colesterol, HDL-colesterol, triglicéridos, calcio, fósforo, magnesio, creatinina, proteínas, albúmina, ácido úrico, bilirrubina, CK, LDH, GOT, GPT, GGT, ALP, aldolasa, lipasa, ADA, colinesterasa, fosfatasa ácida total, fosfatasa ácida no prostática, hierro, ferritina, transferrina, inmunoglobulina G, A y M, C3, C4, cobre, ceruloplasmina, haptoglobina, α1-antitripsina, mioglobina, prealbúmina, fructosamina, ASLO, PCR, FR. microalbuminuria, proteinuria.

11

2.1.4. SECCION DE HORMONAS, MARCADORES TUMORALES Y FARMACOS: CUATRO MESES. HORMONAS: Patología del tiroides: determinación de T3, T4, T4L y TSH por electroquimioluminiscencia; determinación de anticuerpos antitiroideos (Anti TPO y Anti TG). Patología de las glándulas suprarrenales: determinación de cortisol, ritmo de cortisol, cortisol libre en orina y testosterona por electroquimioluminiscencia. Tests de estimulación y supresión. Patología del metabolismo fosfocálcico: determinación de cálcio, fósforo y fosfatasa alcalina por espectrofotometría, PTH intacta por electroquimioluminiscencia, PTH intraoperatoria, hidroxiprolina por cromatografía más espectrofotometría. Patología del metabolismo de la glucosa: determinación de glucosa, glucosuria y fructosamina por espectrofotometría, hemoglobina glicada por HPLC, microalbúmina en orina por inmunoturbidimetría. Pruebas de sobrecarga oral de glucosa. Patología gonadal: determinación de FSH, LH, prolactina, estradiol, progesterona y testosterona por EQL, DHEA-S por electroquimioluminiscencia Pruebas de estimulación. Se completará la formación con la revisión de resultados de las peticiones realizadas en el laboratorio externo, como la 17-hidroxiprogesterona, 11-desoxicortisol, DHEA, ACTH, aldosterona, 4-androstenediona, ADH, insulina, GH, IGF-I ... MARCADORES TUMORALES: Cáncer de mama: determinación de CEA, Ca 15.3 por electroquimioluminiscencia. Cáncer digestivo: determinación de CEA, AFP, Ca 19.9 por electroquimioluminiscencia, 5-HIAA por cromatografía y detección espectrofotométrica, sangre oculta en heces. Cáncer de próstata: PAP por espectrofotometría y PSA por electroquimioluminiscencia. Cáncer de tejido germinal: determinación de AFP y β-HCG por electroquimioluminiscencia. Cáncer de ovario: determinación de Ca 125 y Ca 19.9 por electroquimioluminiscencia. Neuroblastoma y feocromocitoma: catecolaminas en orina y AVM en orina por cromatografía en columna, con detección fluorimétrica y espectofotométrica respectivamente. Cáncer de pulmón: determinación de CEA por electroquimioluminiscencia; determinación de SCC por MEIA. Síndrome carcinoide: determinación de 5-HIAA por cromatografía de intercambio iónico y detección espectrofotométrica.

12

Se completará la formación con la revisión de resultados de peticiones realizadas en el laboratorio externo, como receptores de estrógenos y progesterona, ácido homovanílico, dopamina, serotonina, metanefrinas, catecolaminas en plasma, NSE, calcitonina... FARMACOS: -Determinación de fármacos. Control terapéutico metodología, fisiopatología y valor semiológico. Seguimiento farmacológico. - Antibióticos: vancomicina, tobramicina, gentamicina, amikacina... - Antiepiléptios: ácido valproico, fenitoína, fenobarbital, primidona, etosuximida, carbamacepina... - Cardiotónicos: digoxina. - Broncodilatadores: teofilina. - Analgésicos: ácido acetilsalicílico, paracetamol. -Psicofármacos: litio. -Quimioterápicos: metotrexate. -Inmunosupresores: ciclosporina A, tacrolimus, sirolimus.

13

2.1.5. SECCION DE PROTEÍNAS Y ALERGOLOGÍA: CUATRO MESES. PROTEINOGRAMAS: -Electroforesis de proteínas séricas, de orina y de líquidos biológicos. Manejo del equipo automático de proteinogramas. -Determinación de cadenas ligeras kappa y lambda, complemento total en autoanalizadores poro inmunoturbidimetría. -Determinación de crioglobulinas: método preparativo y semicuantificación de los hallazgos positivos por criocrito y electroforesis -Cuantificación inmunoturbidimétrica de inmunoglobulinas, transferrina, ferritina, fracciones C3 y C4 del complemento, ceruloplasmina, haptoglobina, prealbúmina, α-1-antitripsina, mioglobina, ASLO, PCR y FR. Se completará la formación con los resultados de las peticiones realizadas al laboratorio externo de identificación de bandas monoclonales por inmunofijación en suero y en orina. MISCELANEA: -Determinación espectrofotométrica de xilosa. -Determinación de hemoglobina glicada por HPLC. ALERGIA: -Determinación de IgE total e IgE específicas en el sistema automático mediante fluoroinmunoensayo.

14

2.1.6. SECCION DE LIQUIDOS BIOLOGICOS, ORINAS ESPECIALES Y FERTILIDAD: CUATRO MESES. OSMOLALIDAD: -Determinación de osmolalidad en suero y en orina. Manejo del osmómetro de punto de congelación. Comparación con la osmolalidad calculada. Estudio del gap osmolal. PROCESAMIENTO DE HECES: -Sangre oculta: métodos cualitativos. -pH y cuerpos reductores. -Moco, sangre y pus por microscopía óptica. -Digestión de principios inmediatos: presencia de grasa, almidón y fibras musculares por microscopía óptica. Test cualitativo de presencia de grasa en heces. -Determinación de iones y osmolalidad. -Presencia de hemoglobina fetal en material gástrico o fecal de neonatos: APT test. PROCESAMIENTO DE ORINAS ESPECIALES: -pH y cuerpos reductores. -Proteinuria y microalbuminuria. -Ácido vanil-mandélico por cromatografía en columna y determinación espectrofotométrica. -Ácido 5-Hidroxiindolacético por cromatografía en columna y determinación espectrofotométrica. -Catecolaminas libres fraccionadas por cromatografía en columna y detección fluorimétrica. -Metabolismo del grupo hemo: screening de porfirinas por espectrofotometría, determinación de uroprofirinas y coproporfirinas por cromatografía en columna y detección espectrofotométrica; determinación de ALA y PBG por cromatografía en columna y detección espectrofotométrica. - Determinación de NTx mediante ELISA. -Determinación de hemosiderinuria en el sedimento urinario. Tinción de Perls. PROCESAMIENTO DE LIQUIDO AMNIOTICO: -Test de Clements. -Cociente lecitina/albúmina por polarización de fluorescencia. -Barrido espectrofotométrico para detección de bilirrubina (incremento de absorbancia a 450 nm). ANALISIS DE SEMEN: -Evaluación macroscópica de la muestra: coagulación y licuación; valoración de viscosidad, color y olor.

15

-Volumen. -Medición pH del semen con tiras reactiva. -Valoración de motilidad con examen microscópico en fresco. -Estudio de vitalidad: examen microscópico post-tinción con eosina/nigrosina. -Recuento en cámaras de Neubauer y Makler. -Estudio de formas anormales post-tinción. -Estudio bioquímico: determinación de fructosa, carnitina, citrato y zinc. -Capacitación de semen conyugal y de donante para inseminación artificial. ANALISIS DE CALCULOS URINARIOS: Estudio del cálculo urinario: registro del tamaño, aspecto, dureza y análisis porcentual de los componentes más usuales. LIQUIDOS BIOLOGICOS: Líquido cefalorraquídeo: - Recuento en cámara de Fuchs -Roshental y fórmula post-tinción de Wright. - Determinación de parámetros bioquímicos: glucosa, cloruro, ADA, proteínas. Líquido ascítico: - Recuento en cámara de Fuchs -Roshental y fórmula post tinción de Wright. - Determinación de parámetros bioquímicos: glucosa, proteínas, colesterol, triglicéridos, LDH, amilasa, ADA, marcadores tumorales... Liquido de lavado broncoalveolar: - Recuento en cámara de Fuchs -Roshental y fórmula post-tinción de Wright. Líquido pleural: -Recuento en cámara de Fuchs -Roshental y fórmula post-tinción de Wright. -Determinación de parámetros bioquímicos: pH, glucosa, proteínas, colesterol, tríglicéridos, LDH, amilasa, ADA, marcadores tumorales... Líquido sinovial: - Recuento en cámara de Fuchs -Roshental y fórmula post-tinción de Wright. - Determinación de parámetros bioquímicos: glucosa, proteínas. - Análisis de cristales en el microscopio de polarización.

16

2.1.7. SECCION DE INMUNOLOGÍA, AUTOINMUNIDAD Y BIOLOGIA MOLECULAR: CUATRO MESES. INMUNOLOGIA Y AUTOINMUNIDAD -Análisis de autoanticuerpos por inmunofluorescencia indirecta: anticuerpos antinucleares y anti-dsDNA, anti-centrómero, anti-mitocondriales, anti-LKM, anti-musculo liso, anti-células parietales gástricas, anti-reticulina, anti-citoplasma de neutrófilos, anti-endomisio (IgG e IgA). -Screenig y titulación de ENAS mediante la técnica de ELISA: anti Sm, anti RNP, SSA/Ro, SSB/La, Scl 70, Jo-1. - Anticuerpos anti proteinasa 3 (PR3-ANCA), anti mieloperoxidasa (MPOANCA). -Visión al microscopio de fluorescencia de los patrones celulares en los ANA con las células Hep-2: patrón homogéneo, moteado, nucleolar centromérico, antígeno de proliferación nuclear (PCNA), puntos nucleares múltiples, aparato huso mitótico, membrana nuclear, puente intercelular, filamentos de citoesqueleto, mitocondrial. -Visión de la fluorescencia en cortes de tejido: ac. Antiendomisio, portas de tejido triple de rata etc. con los patrones que se pueden visualizar: mitocondrias, LKM, músculo liso, celulas parietales gástricas, reticulina. -Se completará la formación con los resultados de las peticiones realizadas al laboratorio externo de otros tipos de anticuerpos autoinmunes. PRUEBAS DE BIOLOGIA MOLECULAR: Manejo del termociclador para la realización de estas pruebas de amplificación de ácidos nucleicos. Pruebas de detección de RNA vírico en sangre: -Carga viral de VIH -Detección de RNA de VHC Pruebas de determinación de genotipos: -Factor V Leiden -Mutación de la metiltetrahidrofolatoreductasa -Mutación del gen de la Protrombina. -Mutaciones del gen de la hemocromatosis -Determinación de HLA:

- Tipaje de HLA clase I y II en receptores de trasplante de riñón. - Tipaje de HLA clase I y II en médula ósea (estudio familiar). - Tipaje de haplotipos de riesgo de celiaquía.

17

2.1.8. LABORATORIO DEL CENTRO DE ESPECIALIDADES DE ALMANSA: DOS MESES. - Integración de los conocimientos adquiridos en un solo laboratorio. Visión completa de la analítica de un paciente, desde el punto de vista clínico, bioquímico, hematológico, microbiológico e inmunológico. - Conocimiento de la diferente organización de un laboratorio de pequeño tamaño.

18

2.2. SERVICIO DE HEMATOLOGIA Y HEMOTERAPIA: CINCO MESES. 2.2.1 SECCION DE HEMATOLOGIA: -La sangre. Características generales. Metodología básica. -El hematíe. Eritropoyesis. Morfopatología.

-Mecanismo y diagnóstico de las anemias. -Hemoglobinopatías. -Poliglobulia.

-El leucocito. Granulopoyesis. Morfopatología. Citoquímica. -Insuficiencias medulares. Neutropenia. -Leucemias mieloides. Diagnóstico. -Síndromes mieloproliferativos. -Leucemias linfoides. Diagnóstico. -Linfomas. Enfermedad de Hodgkin y linfomas No Hodgkin.. -Mieloma múltiple. Disproteinemias. -Linfadenopatías y esplenomegalia.

2.2.2. SECCION DE HEMOSTASIA: -Fisiología de la hemostasis primaria y coagulativa. Fisiología de la fibrinolisis y de la hipercoagulabilidad. -Exploración y patología de la hemostasis vaso-plaquetar, de la coagulopatías congénitas y adquiridas, de la fibrinolisis. -Métodos de diagnóstico de la hipercoagulabilidad. Profilaxis y tratamiento de la enfermedad tromboembólica. 2.2.3. SECCION DE HEMOTERAPIA: -Membrana del hematíe. Grupos sanguíneos. Sistema inmune. -Bases teóricas de la transfusión sanguínea. Conceptos en la práctica de la transfusión. Sensibilización. Aglutinación y prueba de la antiglobulina. Pruebas cruzadas. -Derivados del plasma. -Aspectos clínicos de la terapéutica transfusional. Principios de la terapéutica sustitutiva con hemoderivados. Reacciones transfusionales. Hemólisis inmune. - Citometría de flujo: Determinación de subpoblaciones linfocitarias.

19

2.3. SECCION DE MICROBIOLOGIA Y PARASITOLOGIA: ONCE MESES. CONTENIDOS GENERALES Taxonomía bacteriana con interés en la práctica médica: -Microorganismos Gram. (-) y Gram. (+) de interés clínico. Características morfológicas e infecciosas. Métodos de aislamiento y diagnóstico. -Espiroquetas. Micobacterias. Características morfológicas e infecciosas. Métodos de aislamiento y diagnóstico. Virus DNA y RNA de interés clínico. Características morfológicas e infecciosas. Métodos de aislamiento y diagnóstico. Rickettsias. Hongos. Parásitos. Características morfológicas e infecciosas. Métodos de aislamiento y diagnóstico. Principios básicos de las enfermedades infecciosas: Patogenicidad bacteriana. Mecanismos de defensa ante la infección. Inmunidad celular y humoral. -Diagnóstico de las infecciones del sistema nervioso central y aparato locomotor. -Diagnóstico de las infecciones del tracto respiratorio superior e inferior. -Diagnóstico de las infecciones del sistema CV. -Diagnóstico de las infecciones del tracto genitourinario. -Enfermedades de transmisión sexual. -Diagnóstico de las infecciones de ojos, heridas, quemaduras y piel. -Infecciones en el huésped inmunodeprimido. SIDA. -Diagnóstico serológico. Técnicas de diagnóstico rápido en microbiología. Antibioterapia. 2.3.1. SECCION DE RECEPCION Y PROCESAMIENTO DE MUESTRAS: -Comprobación de muestras: correspondencia con los datos del volante. Recogida y transporte adecuados. -Procesamiento específico según el tipo de muestra y/o proceso patológico:

-Tratamiento previo de las muestras. -Siembras en medios adecuados. -Preparación de extensiones para examen microscópico directo.

-Realización de tinciones microbiológicas básicas: Gram., Ziehl, Auramina... -Preparación de reactivos básicos: colorantes, alcohol-acetona, alcohol-clorhídrico... -Realización de pruebas básicas de diagnóstico rápido:

-Detección de estreptococos β-hemolíticos del grupo A. -Detección de estreptococos β-hemolíticos del grupo B. -Detección de rotavirus. -Rosa de Bengala.

2.3.2. SECCION DE UROCULTIVOS, COPROCULTIVOS Y PARASITOLOGICOS.

20

UROCULTIVOS: -Despistaje de urocultivos significativos de infección. -Identificación microbiológica básica:

-Pruebas elementales. -Manejo del sistema semi-automático de identificación.

-Estudios de sensibilidad a los antimicrobianos. -Métodos de diagnóstico rápido: detección de estreptococo β-hemolítico del grupo B en orina. Detección de antigenos capsulares en orina. -Emisión de informes. COPROCULTIVOS Y PARASITOLOGICOS: -Despistaje de coprocultivos significativos de infección: valoración de flora patógena y flora habitual. Identificación, tipación y estudio de sensibilidad a los antimicrobianos. -Investigación de virus en heces: rotavirus, adenovirus. -Lectura de parasitológicos. -Emisión de informes. AGUAS Y MUESTRAS AMBIENTALES: -Sistemática y valoración del análisis de aguas y muestras ambientales. Indicación. Emisión de informes. 2.3.3. SECCION DE RESPIRATORIO: -Selección de muestras respiratorias para estudio microbiológico: clasificación de esputos. -Valoración de muestras respiratorias por examen microscópico directo tras tinción de Graw, Ziehl y Auramina. -Despistaje de cultivos significativos: valoración de flora patógena y flora habitual según el espécimen biológico y el paciente de procedencia: secreciones respiratorias (BAS, BAL, aspirados traqueales, punciones transtraqueales, cepillos bronquiales, esputos), exudados faríngeos y nasales. -Identificación, tipación y estudios de sensibilidad a los antimicrobianos. -Cultivos especiales: Legíonella, Nocardía, Actinomyces, hongos, anaerobios. Indicaciones y seguimiento. -Técnicas rápidas de diagnóstico microbiológico:

-Inmunofluorescencia directa de Legionella. -Tinción de azul de o-toluidina para Pneumocystis cariníi. -Detección de estreptococos β-hemolíticos del grupo A en exudados faríngeos. -Detección de virus respiratorio sincitial en aspirados nasofaríngeos.

-Análisis de Micobacterias: -Uso de cabinas de seguridad y medios de protección. -Procesamiento de muestras: descontaminación, siembra e incubación; valoración de los cultivos y confirmación de los aislamientos.

21

-Identificación y estudio de sensibilidad. 2.3.4. SECCIONES DE HEMOCULTIVOS, EXUDADOS, LIQUIDOS BIOLOGICOS, ENFERMEDADES DE TRANSMISION SEXUAL Y MICOLOGIA: SECCION DE HEMOCULTIVOS: -Procedimiento y sistemática de trabajo en hemocultivos. -Uso del sistema automatizado Bactec para detección precoz del crecimiento microbiano. Realización de subcultivos. -Interpretación de exámenes microscópicos directos. -Realización de estudios de sensibilidad a los antimicrobianos. -Valoración e interpretación de los resultados. -Emisión de informes. SECCION DE EXUDADOS: -Valoración de muestras por examen microscópico directo y tras tinciones. -Despistaje de cultivos significativos: valoración de flora patógena y flora habitual según el espécimen biológico y el paciente de procedencia. -Identificación, tipación y estudios de sensibilidad a los antimicrobianos. -Emisión de informes. 2.3.5. SECCION DE SEROLOGIA: -Indicaciones, validez y limitaciones de los estudios serológicos. -Organización del laboratorio de serología. -Recepción, preparación y conservación de muestras. Registro de volantes. -Técnicas empleadas en serología de bacteriología, virología, micología y parasitología: aglutinación, precipitación, hemaglutinación, inmunofluorescencias, enzimainmunoanálisis, nefelometría. -Interpretación de resultados y emisión de informes. Manejo del sistema informática de serología.

22

2.4. COMISION DE SERVICIOS. OBJETIVOS: Completar la formación del residente en aquellas técnicas de las que actualmente no se dispone en nuestro Hospital: -Medicina nuclear: RIA, IRMA, receptores, test de Schilling... -Técnicas de HPLC. -Cromatografía de gases. -Absorción atómica: determinación de metales. -Biología molecular: determinación de genotipos en diferentes patologías. Diagnóstico genético. -Conocer la organización de otros hospitales. PERIODO DE ROTACION: Las comisiones de Servicio no podrán incluir los 15 días antes de la evaluación del residente. HOSPITALES DE REFERENCIA: La comisión de Servicio se realizará a un Hospital de Referencia, preferentemente la Princesa de Madrid, Virgen de las Nieves de Granada o La Fe de Valencia.

23

2.5. ROTACIÓN POR F.I.V.: DOS MESES. - Capacitación de semen conyugal y de donante para F.I.V. - Captación de ovocitos - Técnicas FIV e ICSI: conocimineto de las técnicas y manejo (mcroscopio de fase invertida) - Transferencias - Técnicas de congelación (congelación de semen de pacientes sometidos a quimioterapia, biopsias testiculares...) - Punciones foliculares en quirófano - Consulta con pacientes sometidos a FIV.

24

2.6. ROTACIÓN LIBRE: CONSOLIDACION Y REPASO POR LAS SECCCIONES QUE HAYAN INCORPORADO NUEVAS TECNICAS. - Rotación de libre diseño por aquellas secciones cuya formación no se haya considerado completa. - Dedicación a trabajos de investigación, manejo de los programas informáticos: Power Point, Word, Excel etc. Búsqueda bibliográfica a través de Internet. Revisiones bibliográficas y revistas de la especialidad en la Biblioteca del Complejo Hospitalario. - Se facilitará la formación en temas de calidad integral del Laboratorio con la realización de cursos de esta materia. - Se recomienda una rotación por el Servicio de Medicina Interna.

25

3. FORMACION DOCENTE E INVESTIGADORA: 3.1. SESIONES REALIZADAS EN EL SERVICIO: -Sesiones monográficas quincenales. -Sesiones de casos clínicos quincenales. -Sesiones de tests semanales. -Sesiones bibliográficas mensuales. 3.2. ASISTENCIA A CURSOS Y CONGRESOS: 3.2.1. CURSOS - Se considera recomendable seguir los cursos de formación continuada de la Sociedad Española de Química Clínica y/o de la Sociedad Española de Biopatología Médica / Asociación Española de Farmacéuticos Analistas. - Cursos básicos de formación incluidos en el Plan de Formación complementaria de los residentes del Hospital: en la programación anual se elegirán los cursos considerados obligatorios. - Asistencia a los cursos de Informática impartidos por el Hospital. Estos cursos son de carácter obligatorio. - Otros cursos: se aconsejará la asistencia a aquellos cursos que se consideren necesarios para la formación del residente. 3.2.2. ASISTENCIA A CONGRESOS Se recomienda la asistencia al Congreso de la Sociedad Española de Química Clínica o bien al de la Sociedad Española de Biopatología Médica / Asociación Española de Farmacéuticos Analistas. 3.3. OBJETIVOS DE INVESTIGACION: Se introducirán poco a poco, en la realización de comunicaciones a Congresos de la especialidad, y en la colaboración en la organización y diseño de los posters. Se fomentará la participación en publicaciones de artículos originales y de revisiones en revistas relacionadas con la especialidad. Se colaborará de forma activa en trabajos de investigación planteados por otros Servicios del Hospital.

26

4. GUARDIAS DE LA ESPECIALIDAD: 4. 1. CONTENIDO Y NUMERO DE GUARDIAS: En las guardias de presencia física se atenderán las peticiones de determinaciones analíticas urgentes, tanto procedentes del Servicio de Urgencias como de los otros Servicios del Hospital General, así como las del Hospital del Perpetuo Socorro del Complejo Hospitalario. Los residentes adscritos al Servicio de Análisis Clínicos realizarán, preferentemente, 5 guardias por mes (en las que se tiene que incluir, al menos, un festivo). En caso de necesidad se ampliarán a 6. La séptima guardia se reservará a períodos de vacaciones o bien cuando se produzcan situaciones especiales. Siempre y cuando el número de residentes así lo permita SE CUBRIRAN TODAS LAS GUARDIAS, siendo imprescindible la presencia. En caso de ENFERMEDAD o CAUSA TOTALMENTE JUSTIFICADA otro residente cubrirá la guardia; en caso de no ponerse de acuerdo la norma del Servicio es ordenar a los residentes por año decreciente y apellido, aplicando el criterio N+2, siendo N el residente ausente. Si la baja es inferior a 3 días, será compensada a favor del compañero que haya hecho la sustitución. En caso de COMISISONES DE SERVICIO, CURSOS O CONGRESOS DE LA ESPECIALIDAD, APROBADOS POR EL TUTOR, se aplicará el mismo criterio. 4.2. OBJETIVOS DE LAS GUARDIAS: RESIDENTE DE PRIMER AÑO: Dominio de técnicas manuales y automáticas del laboratorio de urgencias. Capacidad de discriminación de resultados anómalos: malfuncionamiento de los analizadores, interferencias analíticas, alteraciones en la recogida y procesamiento preanalítico de las muestras y errores de transcripción de los resultados. RESIDENTE DE SEGUNDO AÑO: Interpretación correcta de los resultados. Valoración de la prioridad de una urgencia frente a otra y de una determinación frente a otra en caso de escasez de muestra. Colaboración con el Clínico en caso de problemas analíticos. RESIDENTE DE TERCER AÑO: Autonomía y responsabilidad práctica del laboratorio en la guardia. Presencia de un adjunto de apoyo. Soluciones de emergencia frente a la avería de un analizador. Recursos a partir de otros analizadores o puesta en marcha de técnicas manuales. RESIDENTE DE CUARTO AÑO: Autonomía y responsabilidad de la guardia, evitando la necesidad de apoyo del facultativo, en la medida de lo posible.

27

5. NORMATIVA REFERENTE A LAS VACACIONES: El permiso anual reglamentario deberá hacerse efectivo durante los meses de Julio, Agosto y Septiembre. Se disfrutará de un mes natural o dividido en quincenas que tendrán que ser del 1 al 15 ó del 16 al 30 de cada mes. Los días de libre disposición se disfrutarán, preferentemente en Semana Santa o en Navidad, no pudiendo ser acumulados en períodos de Vacaciones. No se podrá ir en cada período vacacional más de un tercio de los residentes que forma parte del colectivo de la guardia. Todos los permisos, vacaciones y bajas se deberán firmar por el Jefe del Servicio y entregar en Personal.

28

6. EVALUACION PERIODICA ANUAL: 6.1. EVALUACION PERIODICA: En el período final de cada rotación se valorará el proceso de aprendizaje del residente como consecuencia de la supervisión continuada del facultativo responsable de la sección correspondiente. 6.2. EVALUACIÓN ANUAL: Se realizará por el tutor de la especialidad, teniendo en cuenta los conocimientos adquiridos, el cumplimiento de los objetivos docentes y el interés y aprovechamiento del tiempo y los recursos, la relación con el paciente y el entorno laboral. En todo momento el tutor será asesorado por los Facultativos responsables de la Sección o Servicio en que se efectuara la rotación.

29

ESTE ES EL PLAN DOCENTE DE LA ESPECIALIDAD, QUE SE ENCUENTRA EN LA JEFATURA DE ESTUDIOS Y ESTA APROBADO POR LA COMISION DE DOCENCIA DE ESTE HOSPITAL.

30