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INFECCIONES DE VIAS RESPIRATORIAS ALTAS
ACADEMIA DE
MICROBIOLOGIA
BACTERIOLOGIA
MEDICA
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FACULTAD DE
QUIMICO
FARMACOBIOLOGIA INFECCIONES DE VIAS
RESPIRATORIAS ALTAS
QFB JUAN MANUEL BARAJAS MAGALLON
ESCUELA DE QUIMICO-FARMACOBIOLOGIA
MICROBIOLOGIA II
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Vías
respiratorias
altas
Vías
respiratorias
bajas
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Virus: Virus respiratorios (Adenovirus, Virus sincicial resparatorio, Virus de la Influenza y de la parainfluenza), Enterovirus, Virus del Herpes simple tipo I Hongos:Candida albicans Otros patógenos del aparato respiratorio superior:Bordetella pertussis, Streptococcus pneumoniae y Neisseria meningitidis son mas facilmente aislados de exudados paranasales y nasofaringeos.
Gram negativos Organismo de vincent (Borrielia vincenti, Leptotrichia buccalis , Bacteroides melanoliticus)
Gram positivos Streptococcus pyogenes Otros Estreptococos Beta-Hemoliticos Corynebacterium diphteriae Corynebacterium ulcerans
PATÓGENOS POSIBLES
FARINGITIS
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Gram negativos Moraxella catarrhalis Neisseria sp Fusobacterias Coliformes Bacteroides sp Haemophilus influenzae no capsulado
Microorganismos comensales faringe
Gram positivos
Streptococcus viridans
Estreptococo no hemolítico
Streptococcus pneumoniae no capsulado
Staphylococcus epidermidis
Micrococos
Lactobacilos
Difteroides
También varias espiroquetas, actinomicetos, organismos esporulados
aeróbicos y anaeróbicos, así como algunas levaduras.
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• Coco
• Se asocia en cadenas
• Gram positivo
• B-hemolítico
• Catalasa Negativo
• Coagulasa Negativo
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La formación de cadenas es
característica de su clasificación
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Grupo A - Streptococcus pyogenes
Grupo B - Streptococcus agalactiae
Grupo C - Streptococcus equisimilis, Streptococcus equi, streptococcus
zooepidemicus, Streptococcus dysgalactiae
Grupo D - Enterococcus, Streptococcus bovis
Grupo E - Streptococcus milleri y Streptococcus mutans
Grupo F - Streptococcus anginosus
Grupo G - Streptococcus canis, Streptococcus dysgalactiae
Grupo H - Streptococus sanguis
Grupo L - Streptococcus dysgalactiae
Grupo N - Lactococcus lactis
Grupo R&S - Streptococcus suis
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FACTORES DE VIRULENCIA DE
Streptococcus pyogenes
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Factores de virulencia de S. pyogenes
Estreptoquinasa
La estreptoquinasa activa enzimáticamente al plasminógeno, una
enzima proteolítica plasmática que digiere a la fibrina (proteína que
forma los coágulos) y otras proteínas.
Hialuronidasa
La hialuronidasa rompe el ácido hialurónico, un importante
componente del tejido conectivo, facilitando la expansión de la
infección.
Estreptodornasa
Una ADNasa, la estreptodornasa depolimeriza el ADN. El huésped
produce anticuerpos contra esta enzima, que pueden ser utilizados
para el diagnóstico serológicos de las infecciones por Streptococcus
pyogenes.
Otras toxinas
Incluye la peptidasa anti-C5a y otras.
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Factores de virulencia de S. pyogenes
Estreptolisina O y S
•Tóxinas que son la base de las propiedades beta-hemolíticas del
organismo. La estreptolisina “O” genera respuesta inmune, en la cual se
pueden detectar anticuerpos en el suero.
•la antiestreptolisina O (ASLO) se usan para confirmar una reciente
infección por S. pyogenes
•La estreptolisina S es una hemolisina adherida a la célula y estable
frente al oxígeno, no es inmunogénica, es capaz de lisar eritrocitos, así
como leucocitos y plaquetas tras contacto directo.
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Erisipela y Escarlatina causadas por Streptococcus pyogenes
Toxina Piogénica
Encontrada en las cepas de S. pyogenes responsables de la fiebre
escarlatina y del síndrome de shock tóxico estreptocócico. El gen
de la toxina es proporcionado por un fago lisogénico.
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Streptococcus pyogenes Síndromes Clínicos Generados
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FARMACOBIOLOGIA Impetigo y Fascitis
necrotizante
causadas por S. pyogenes
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Facistis necrotizante por
Streptococcus pyogenes
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FASCITIS NECROTIZANTE Paciente femenino de 7
años, con diagnostico de
varicela de 15 días de
evolución
Ingresa al hospital por
presentar dolor en el
hombro izquierdo con una
lesión necrótica, se
diagnostica como Fascitis
necrotizante
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TOMA DE
MUESTRAS
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Color de la
Faringe
Hiperémica
Color de la
Faringe Normal
Úvula
hiperemica
Pared posterior
de la faringe
FARINGITIS
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Placas Infecciosas
Amigdalinas
(Generalmente drenan
pus)
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AMIGDALITIS
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Coloque al paciente frente a sus
ojos
Tenga una lámpara a la mano
EXUDADO FARINGEO
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EXUDADO FARINGEO
Localizar las zonas lesionadas y
evaluar
Tomar la secreción de las
amígdalas o de la pared
posterior de la faringe, en un
movimiento rápido sin tocar la
úvula
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Faringe Hiperémica
con afectación
amigdalina y de la
pared superior de la
faringe
Vejigas supurativas
de la pared posterior
de la faringe
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Recomendaciones
- La muestre se toma con hisopo
de Dacrón, estéril.
-Una vez tomada la muestra se
conserva el hisopo en un medio
de transporte Amies/Cary
Blair/Stuart
-El tiempo de conservación es de
12 a 24 horas
- Se conserva a temperatura
ambiente (No refrigerar)
EXUDADO FARINGEO
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- No se requiere ayuno
- para Exudados faríngeo y nasales, no afecta si el paciente se
lava los dientes.
- Es recomendable interrogar al paciente para saber
1. Si tomo o esta tomando medicamento, particularmente
antibióticos.
2. Cuales son los síntomas presenta.
3. Cuanto tiempo tiene con el problema
4. Si hay fiebre, tos, rinorea, si arroja flemas, etc.
RECOMENDACIONES GENERALES PARA LA
TOMA DE MUESTRAS MICROBIOLOGICAS
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El cultivo primario o de Primo-
aislamiento permite cultivar la
totalidad de las bacterias presentes
en la muestra, tanto las que pueden
ser patógenas como las de Flora
normal
Es recomendable cultivar las muestras en:
- Agar Sangre de carnero al 5 %
-Agar Sangre achocolatada al 5 %
- Algún medio equivalente
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- Tamaño
- Borde
- Consistencia
- Hemolisis
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IDENTIFICACIÓN Y
CARACTERIZACIÓN
COLONIAL
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Staphylococcus aureus
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COCOS GRAM POSITIVOS
+ - Staphylococcus (cúmulos) Streptococcus (pares o cadenas)
Catalasa
Coagulasa
Nota: S. viridans es un Coco Alfa
hemolitico y todos las pruebas de
abajo son negativas
PROTOCOLO DE IDENTIFICACION
Staphylococcus
Coagulasa negativo
Staphylococcus
aureus (Manitol +)
+ - Hemolisis Prueba Resultado Microorganismo
Optoquina +Solubi l idad en bi l i s +
Bacitracina +cAMP/Hipurato -
Bacitracina -cAMP/Hipurato +
Uti l i zación de la Bi l i s -
escul ina +Crecimiento en ca ldo
con 6.5 % de Cloruro
de sodio+
Uti l i zación de la Bi l i s -
escul ina +Crecimiento en ca ldo
con 6.5 % de Cloruro
de sodio-
AlfaStreptococcus
pneumoniae
Beta
Streptococcus
pyogenes (EBH-A)
Streptococcus
agalactie (EBH-B)
Gamma
Streptococcus grupo D
(Enterococcus faecalis )
Estreptococcus grupo
D, (No enterococo)
Sensibilidada a
Novobiocina
S. saprophyticus
Staphylococcus spp
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IDENTIFICACION COLONIAL
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CULTIVO SECUNDARIO O
REASLAMIENTO
El objetivo es que se
obtengan colonias
aisladas para hacer
las pruebas de
identificación y de
susceptibilidad a los
antibióticos
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IDENTIFICACION DE
ESTAFILOCOCOS
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Estreptococos
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DETERMINACIÓN DE CATALASA
Objetivo de la Técnica: Detectar
la producción de la enzima
“Peroxidasa o Catalasa”, la
cual solo es producida por
Estafilococo y es negativa para
Estreptococo
Se coloca una gota de Peróxido
de Hidrógeno al 3% sobre un
portaobjetos y con un palillo de
madera se coloca la bacteria
mezclandola don el peróxido
Staphylooccus ( + )
Streptococcus ( - )
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Hemolisis Prueba Resultado Microorganismo
Optoquina +Solubi l idad en bi l i s +
Bacitracina +cAMP/Hipurato -
Bacitracina -cAMP/Hipurato +
Uti l i zación de la Bi l i s -
escul ina +Crecimiento en ca ldo
con 6.5 % de Cloruro
de sodio+
Uti l i zación de la Bi l i s -
escul ina +Crecimiento en ca ldo
con 6.5 % de Cloruro
de sodio-
AlfaStreptococcus
pneumoniae
Beta
Streptococcus
pyogenes (EBH-A)
Streptococcus
agalactie (EBH-B)
Gamma
Streptococcus grupo D
(Enterococcus faecalis )
Estreptococcus grupo
D, (No enterococo)
Estreptococos
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Determinación de Sensibilidad a la
Bacitracina 0.04 mg/ml, Prueba
presuntiva para identificar a S. pyogenes
SENSIBILIDAD A LA BACITRACINA
> 5 mm
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S. pyogenes
S. agalactie
Prueba de cAMP
S. aureus Se basa en que los
estreptococos del
grupo B producen un factor
llamado CAMP (factor de
monofosfato de adenina cíclica)
que aumenta la zona de
hemólisis producida por un
estafilococo productor de ßlisina.
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Prueba de cAMP
El cAMP
producido por
S. aureus
difunde en el
medio y
potencia la
acción de la
hemolisina de
S. agalactie
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La esculina contiene un carbohidrato unido a un
compuesto aromático.
Este test se usa para distinguir especies de
Streptococcus de grupo D “Enterococcus faecalis”
Se crecen las bacterias en un medio complejo que
contiene 0,01 % de esculina y un 0,05 de citrato férrico
BILIS-ESCULINA
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COCOS GRAM POSITIVOS
+ - Staphylococcus (cúmulos) Streptococcus (pares o cadenas)
Catalasa
Coagulasa
Nota: S. viridans es un Coco Alfa
hemolitico y todos las pruebas de
abajo son negativas
PROTOCOLO DE IDENTIFICACION
Staphylococcus
Coagulasa negativo
Staphylococcus
aureus (Manitol +)
+ - Hemolisis Prueba Resultado Microorganismo
Optoquina +Solubi l idad en bi l i s +
Bacitracina +cAMP/Hipurato -
Bacitracina -cAMP/Hipurato +
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escul ina +Crecimiento en ca ldo
con 6.5 % de Cloruro
de sodio+
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escul ina +Crecimiento en ca ldo
con 6.5 % de Cloruro
de sodio-
AlfaStreptococcus
pneumoniae
Beta
Streptococcus
pyogenes (EBH-A)
Streptococcus
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Gamma
Streptococcus grupo D
(Enterococcus faecalis )
Estreptococcus grupo
D, (No enterococo)
Sensibilidada a
Novobiocina
S. saprophyticus
Staphylococcus spp
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COAGULASA Objetivo: Determinar si el
estafilococo produce la
enzima coagulasa.
Técnica: Colocar en un
tubo plasma fresco,
suspender una colonia de
la cepas aislada. Se
incuba a 37º C por 4 a 6
horas
Interpretación:
Positivo: Staphylococcus aureus
Negativo: Staphylococcus coagulasa negativa (S. epidermidis, S.
saprophyticus, S. albus, S. haemolyticus, S. dublinensis)
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UTILIZACION DE MANITOL
Objetivo: determinar si el estafilococo
tiene la capacidad de utilizar el manitol
como fuente de carbono.
Método: en un medio de CTA con
manitol, se inocula la cepa a ensayar y
se incuba a 37º C por 18 a 24 horas.
Interpretación: S. aureus fermenta el
manitol, el resto de los estafilococos no
lo hacen.
- +
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TOS FERINA
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La tos ferina es una infección respiratoria
ocasionada por la bacteria Bordetella
pertussis.
Los primeros brotes fueron descritos en el
siglo XVI.
En el año 2002 ocasionó 294,000 muertes en
el mundo.
ANTECEDENTES DE LA TOS
FERINA
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EPIDEMIOLOGÍA
Es una infección altamente contagiosa.
Su tasa de ataque secundario es de más de
90%.
En menores de 6 meses frecuentemente es
una enfermedad mortal.
Los adolescentes y adultos son
comúnmente, la principal fuente de contagio en
niños no vacunados.
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Tos Ferina
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Se alojan en el sistema respiratorio humano fijándose primeramente
al epitelio ciliado del tracto respiratorio y después en los alvéolos
pulmonares causando necrosis. La vía de contagio para la
Bordetella pertussis es por medio de gotitas nasales de aerosol de
persona a persona.
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EPIDEMIOLOGÍA
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Es una enfermedad mediada por toxinas.
Produce un proceso inflamatorio y de
parálisis ciliar, que disminuye el aclaramiento
de las secreciones respiratorias, lo que
ocasiona los accesos clásicos de tos.
PATOLOGÍA
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60
Periodo de incubación de 7 – 10 días (4 – 21 días).
Inicio insidioso, comúnmente como cuadro catarral.
Sin fiebre o fiebre de bajo grado.
En niños se presentan las 3 fases características:
Fase catarral 1 – 2 semanas.
Fase paroxística 1 – 6 semanas.
Fase convalescencia Semanas a meses.
En adolescentes y adultos el cuadro es atípico:
Asintomático.
Tos prolongada.
Menos frecuente cuadro clásico.
CARACTERÍSTICAS CLÍNICAS
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Antibiótico adecuado, dosis y duración del tratamiento
correctos.
Macrólidos:
Eritromicina
Claritromicina
Azitromicina.
Trimetoprim/Sulfametoxazol (alergia a macrólidos)
Inútil utilizar otros antibióticos.
TRATAMIENTO
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Vacunación
Medidas de higiene respiratoria
Vigilancia epidemiológica
Tratamiento adecuado de casos y contactos
PREVENCIÓN
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63
Hay brotes de Tos ferina en 3 Estados del norte
del país.
La población más afectada es la de menores de
6 meses de edad (86% de los casos).
El 66% de los contactos con cultivo positivo
son mayores de 14 años de edad.
En 70-75% de los casos en menores de 1 año
se logra demostrar un contacto en casa.
ESTADO ACTUAL
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DIFTERIA
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Hipócrates “enfermedad tonsilar peligrosa”
Brettoneau (difte=membrana) causada por un germen y que
se transmitía de persona a persona.
Trousseau Daño miocárdico y renal en los casos graves.
Loeffler en 1884 cultivar el germen (bacilo de Klebs-Löeffler)
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PERFIL HISTORICO
Lehmanny Newmanlo Corynebacterium diphteriae.
En 1885 Roux y Yersin purificaron la toxina produce la enfermedad.
Behring y Kitasato Describieron la antitoxina.
Schick Test cutáneo para demostrar la susceptibilidad
del individuo a la difteria
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DIFTERIA
Es una enfermedad infecciosa aguda
causada por la bacteria denominada
Corynebacterium diphtheriae
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DIFTERIA
• Corynebacterium
diphtheriae
– Bacilo pleomorfico gram (+)
– Cepas toxigénicas o no
toxigénicas
Gravis + agresivo
• 4 tipos Bellanti
Intermedius
Mitis
Centers for Disease Control and Prevention. Epidemiology and Prevention of Vaccine-Preventable Diseases. Atkinson W, Hamborsky J,
McIntyre L, Wolfe S, eds. 10th ed. Washington DC: Public Health Foundation, 2007.
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EPIDEMIOLOGIA
• En los Estados Unidos
– < de 5 casos al año.
• En los años 90 surgieron miles de
casos en zonas de la ex-URSS
• Endémica de países en desarrollo
– Tiene una elevada morbi-mortalidad.
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EPIDEMIOLOGIA
• México
– En 1991 se presentó el ultimo caso
– Ha desaparecido como causa de
morbilidad y mortalidad en la población
infantil
Programa Nacional de vacunación
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FISIOPATOLOGIA
• Periodo de incubación de 2 a 6 días
• Toxina
– Inhibe la síntesis proteica celular
– Destrucción de los tejidos
– Formación de membranas
• Diseminar vía hematógena Holmes, Randall K. “Biology and Molecular Epidemiology of Diphtheria Toxin and the tox Gene.” The Journal of Infectious Diseases 181 (Suppl 1) (2000): S156-67.
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FACTORES DE RIESGO
• Hacinamiento
• Falta de medidas higiénicas
• No estar vacunado
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PATOGENIA
• Presencia del germen
• Acción necrotizante de la
toxina
• Paso de la exotoxina a
torrente sanguineo
• Lesiones locales
– Mucosa faringea
– Laringe
– Nariz
– Conjuntivas
– Rara vez localizadas en la
piel
• Lesiones a distancia
– Miocárdicas
– Sistema nervioso
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CUADRO CLINICO 2 a 5 días después
Coloración azulada de la piel
Rinorrea
Problemas respiratorios:
Disnea
Polipnea
Estridor
Escalofríos
Tos similar a la de crup (perruna)
Fiebre
Odinofagia
Lesiones en la piel (generalmente se observan en las
áreas tropicales)
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DIFTERIA RESPIRATORIA
• Trastornos de vías respiratorias
– Odinofagia
– Febrícula
– Membrana adherente
• Amigdalas, faringe o nariz
• Amigdalina Pseudomembranas
amigdalas
– Grave Adenopatia + edema cervical
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DIFTERIA RESPIRATORIA
• Laringea
– Ronquera
– Tos
• Nasal
– Epistaxis
– Rinorrea
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DIFTERIA RESPIRATORIA
• Maligna
– “Cuello de bisonte” con extensa
formación de pseudomembranas
– Tumefacción en amigdalas
– Linfadenopatias cervicales
– Edema submandibular
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DIFTERIA CUTANEA
• Dermatosis previa
• Lesión
– Úlcera
– Cubierta de membrana necrótica
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DIAGNOSTICO • Cultivos
– Nasal
– Faringeo
– Piel
• Reacción intradérmica de Shick
– Reacción inflamatoria si existe
antitoxina en circulación
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Corynebacterium spp
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TRATAMIENTO
• Antitoxina diftérica
• Erradicar la bacteria
– Eritromicina 40 mg/kd día durante 14
días
– Penicilina G 300 000 U durante 14 días
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COMPLICACIONES
• Obstrucción respiratoria
– Pseudomembrana extensa
– Tumefacción de la via aerea
• Cardiacas
– Miocarditis
– Endocarditis
• Transtornos de la conducción
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COMPLICACIONES
• Polineuropatia
– 3 a 5 semanas despuues
• Disfonia
• Disfagia
• Parestesias
• Paresias
• Neumonía
• Insuficiencia Renal
• Embolia pulmonar
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Coco Gram positivo
Se asocia en diplococos
Coloniza la nasofaringe
Genera: Neumonía, meningitis y artritis
séptica
Streptococcus pneumoniae
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Factores de Virulencia
Cápsulas (Antifagocitica)
Neumolisina (Dermatóxica)
Neuroaminidasa
Autolisina (Activa para la división celular de
la bacteria)
Wolfgang k, Willett H. Amos D. Zinsser Microbiología, Ed.
Panam, Argentina,1989
(Enzima activa contra
glucoproteínas y glucolípidos
celulares)
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La neumolisina es una
proteína monomérica
soluble producida en el
citoplasma de la bacteria.
Cuando S. pneumoniae se
lisa la nemolisina queda
libre y se une al colesterol
de las membranas
celulares formando
grandes arcos oligómeros
que originan lesión de la
célula y su lisis.
DERMOTOXINA
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La neumolisina es
un potente
inhibidor del
movimiento ciliar
del epitelio de las
vías respiratorias.
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La colonización de la
nasofaringe por S.
neumoniae es
usualmente
asintomática.
El microorganismo
pasa a pulmón, sangre
o SNC, como resultado
de estrés mecánico o
alteración de los
mecanismos de
defensa del huésped.
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Streptococcus pneumoniae es
uno de los principales agentes
que producen meningitis junto
con Haemophilus influenzae y
Streptococcus agalactie
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El Streptococcus pneumoniae es la causa más común de
neumonía adquirida en la comunidad en adultos mayores de
65 años y niños menores de 2 años
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Meningitis por Haemophilus influenzae y
Streptococcus pneumoniae
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EL LIQUIDO CEFALORAQUIDEO
LCR - AGUA DE ROCA
LCR - PURULENTO
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Existen alrededor de 90 serotipos
clasificados en base al antígeno
capsular, de los cuales solo 30
se han asociado a infección en
el hombre y solo 15 de ellos se
encuentran en niños
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IDENTIFICACIÓN Y
CARACTERIZACIÓN
COLONIAL
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Streptococcus pneumoniae
• Se aísla en agar sangre de Borrego
• Diplococo Gram positivo
• Hemólisis alfa
• Optoquina sensible (mayor o igual a 14 mm)
• Solubilidad en bilis al 10 %
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Streptococcus
pneumoniae es
de los pocos
patógenos Alfa
Hemolíticos
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El centro deprimido en las colonias de neumococo es la
característica principal para su identificación, la autolisis
generada por la neumolisina le da su rasgo característico a la
colonia
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Cultivo de Streptococcus pneumoniae (Neumococo) en sangre
Colonias mucoides (Capsuladas), Alfa-hemoliticas, grandes
Identificación de
Streptococcus
pneumoniae
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Hemolisis Prueba Resultado Microorganismo
Optoquina +Solubi l idad en bi l i s +
Bacitracina +cAMP/Hipurato -
Bacitracina -cAMP/Hipurato +
Uti l i zación de la Bi l i s -
escul ina +Crecimiento en ca ldo
con 6.5 % de Cloruro
de sodio+
Uti l i zación de la Bi l i s -
escul ina +Crecimiento en ca ldo
con 6.5 % de Cloruro
de sodio-
AlfaStreptococcus
pneumoniae
Beta
Streptococcus
pyogenes (EBH-A)
Streptococcus
agalactie (EBH-B)
Gamma
Streptococcus grupo D
(Enterococcus faecalis )
Estreptococcus grupo
D, (No enterococo)
Estreptococos
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Identificación de Streptococcus
pneumoniae
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Solubilidad en Bilis Objetivo: Detectar a los S.
pneumoniae que son disueltos por la
bilis al 10 %
Se prepara una solución al 10 % de
Desoxicolato de sodio en agua
destilada estéril, se coloca con un
asa una colonia bacteriana y se agita
ligeramente
Interpretación: Los S. pneumoniaes
después de unos segundos la
suspensión queda translucida,
mientras que los que no son
neumococos la suspensión queda
turbia.
(-) (+)
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Técnica de Quellug o hinchazón de capsula
Se coloca en una suspensión de S. pneumonia en Sol. Salina una
gota de antisuero especifico contra neumococo, se incuba por 5 min.,
se adiciona safranina y se coloca una gota sobre un portaobjetos, se
adiciona al portaobjetos una gota de tinta china y se mezcla se
observa al microscopio en el objetivo 100 X
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Haemophilus
influenzae
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Es un cocobacilo inmóvil no esporulado, pleomórfico en sus
estadios tardíos de crecimiento.
Se le encuentra con mayor frecuencia en la nasofaringe de niños
lactantes y menores de seis años.
Posee una cápsula constituida por un polímero lineal de ribosil-
ribitolfosfato (PRP) llamado polisacárido capsular b.
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Existe evidencia experimental de que las fimbrias capacitan al
microorganismo para adherirse a las superficies mucosas el
huésped, evento importante y necesario para la colonización.
La presencia de fimbrias se ha demostrado claramente en las
cepas aisladas de origen clínico de H. influenzae, tanto en las
no tipificables como en las del serotipo b.
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Los miembros del género
Haemophilus son parásitos estrictos,
tanto de humanos como de otros
vertebrados
Suelen estar presentes en las vías
respiratorias superiores de individuos
de poblaciones sanas, variando su
frecuencia en un rango de 15 al 50
por ciento.
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FACTORES DE VIRULENCIA
El polisacárido capsular, el cual actúa
como un "escudo" en contra de las
proteínas del complemento.
La actividad lítica del complemento es
mayor hacia los otros cinco serotipos
capsulares de Haemophilus infuenzae,
que para el serotipo b
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Haemophilus influenzae
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Facklam R, Richard, Isolation and identification of Streptococci, CDC
Laboratory Update, 1995
COAGLUTINACIÓN Los anticuerpos se pegan a
partículas de látex y al ponerse
en contacto con el antígeno, las
partículas que se forman son de
un tamaño mayor, esto evidencia
la presencia del antígeno mas
rápidamente y a simple vista
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COAGLUTINACIÓN
Esta técnica se emplea
además de manera
directa con el LCR en
casos de meningitis
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Serotipos México 7 valente 9 Valente 11 Valente 13 Valente
14 11 % x
6A/6B 17.8 % x
23F 17.1 % x
19F 6.6 % x
9V 3.8 % x
4 2.8 % x
18C 2.8 % x
7F 0.9 % x
3 1.9 % x
5 2.6 % x
1 1.9 % x
19A 6.6 % x
9N 0.2 %
Otros 24 %
Suma 100 % 59.1 63.6 65.4
Fuente: Sireva-Vigia Group, Evolution of Streptococcus pneumoniae serotypes and
penicillin susceptibility in Latin America, 1993 to 1999, Pediatr Infect Dis J,
2001;20-959-67
Los 13 Serotipos mas frecuentes en México 426 (1993-1999)
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Fuente: Archivo del laboratorio de microbiología, HIM
Tendencias presentadas por S pneumoniae
y H influenzae
aislados de Procesos invasivos
Hospital Infantil de Morelia
0
2
4
6
8
10
12
1996
1997
1998
1999
2000
2001
2002
2003
2004
2005
2006
2007
ca
so
s
S.pneumoniae H. influenzae b
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S. pneumoniae aislado de procesos invasivos
Hospital Infantil de Morelia
0
2
4
6
8
10
1996 1997 1998 1999 2000 2001 2002 2003 2004 2005 2006 2007
caso
s
FUENTES: ARCHIVO DE LIMP.
PROCESOS INVASIVOS: MENINGITIS, SEPTICEMIAS, NEUMONIAS,
ABSCESOS Y DERRAMES PLEURALES.
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Serotipos cubiertos por la vacuna 7.Valente
Fuente: Echaniz A, G, CISEI-INSP / LIMP-HIM
Serotipos
Vacuna 7-valent
4
6A/6B
9V
14
18C
19A
23F
No Incluidos
México
(Hasta 2000)
N = 661
16 (2.4 %)
71 (10.7 %)
30 (4.5 %)
59 (8.9 %)
23 (3.4 %)
32 (4.8 %)
113 (17 %)
317(47.9 %)
Invasivas
N=5
3
2
0
No invasivas Control
N=24 N=15
6 2
4 1
7 3
7 (29.1%) 9 (60 %)
Cobertura 52.1% 100 % 70.8 % 30 %
Hospital Infantil de Morelia
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PROCESOS INVASIVOS POR Streptococcus pneumoniae
EN EL HOSPITAL INFANTIL DE MORELIA
“EVA SAMANO DE LOPEZ MATEOS”
2005
Muestra Serotipo
LCR 14
LCR 19F
ABSCESO 19F
2006
PLEURAL 5
ABSCESO 6B
SECRECION 19f
LCR 19F
HEMOCULTIVO Y LCR 18C
2007
Muestra Serotipo
SINOVIAL 19F
LCR 7
2008
LCR 19A
LCR 6B
FUENTES: INSP. CICEI, InDRE, HIM.
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Sensibles
Resistentes
Resistencia a Penicilina
Fuente: Archivo del Laboratorio de Investigación de Microbiología y Parasitología.
70%
30%
Total de Cepas: 44
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En México como en otros países, H. influenzae
serotipo b es una de las principales causas de
meningitis y de casos severos de infecciones del
tracto respiratorio bajo.
En nuestro país, la muerte por neumonía
representa hasta un 70 por ciento de todas las
defunciones en niños menores de un año de
edad.
En otros países esta cifra varía entre 8 y 40 por
ciento. México, por lo tanto, se encuentra en el
grupo con tasas altas de mortalidad por dicha
enfermedad3
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Para su crecimiento requiere de un medio complejo que contenga
nicotinamida adenina-dinucleótido (factor v) y hemina (factor x).
Comunmente posee plásmidos de tamaño variable que codifican
para B-lactamasas y acetil-transferasas; la frecuencia con que se
aíslan estas cepas resistentes a los antibióticos de uso común ha
complicado el tratamiento de las infecciones invasivas causadas por
HINB.
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Bacilo Pleomórfico
Gram negativo
Oxidasa positivo
Facultativo
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El cultivo primario de Haemophilus influenzae
se hace en un medio altamente enriquecido
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MEDICA
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QUIMICO
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(1) Muestras
Clínicas
(3) Agar sangre
( -)
(2) Tinción Gram
(3) Cultivo
(3) Agar chocolate
( + )
Cocobacilos
Gram Positivos
(5) Satelitismo
Agar M. Hinton
( - )
Agar Sangre
( + )
Hemocultivo
LCR
LBA
Medio Fildes
(6)
Indol +
Urea +
Ornitina +
Arginina +
(7) Serotipificación
A, b, c d, e f.
(4)
Oxidasa +
Catalasa -
(2) Tinción Gram
Cocobacilos
Gram Positivos
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Haemo = Sangre
Philus = Amor o afinidad
Requerimientos nutricionales
Grupo Hem de la Hemoglobina
y en NAD producido por S. aureus
Haemophilus
influenzae
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Clasificación de H. Influenzae en base a a su
reacción bioquímica (Indol, Urea y Ornitina)
Biovar I Biovar II
Biovar III Biovar IV
Biovar V Biovar VI
Biovar VII Biovar VIII
Kilian M, A taxonomic study of the genus Haemophilus with the
proposal of a new `species. J Gen Microb 1976, 93: 9-62
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La enfermedad inicia con la invasión bacteriana del torrente
sanguíneo, conocida como sépsis. (Existe una relación estrecha
entre el tamaño del inoculo y la sepsis)
La sepsis sostenida después de la colonización nasofaríngea
solamente ocurre con cepas de Haemophilus que elaboran
cápsula tipo b, en contraste con lo que ocurre con los serotipos
(a, c, d, e, y f), incapaces de sobrevivir e invadir el torrente
sanguíneo.
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Clasificación de Pitman, 1931 de H. Influenzae
en base a su antígeno capsular
Serotipos
a, b, c, d, e, f y NT
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Técnica para detección de
antígenos solubles:
St pneumoniae
St agalactie EBH-B
H. Influenza tipo B
Neisseria Meningitidis A
Neisseria Meningitidis B
E coli K 100
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ENFERMEDADES RESPIRATORIAS
PREVENIBLES POR VACUNACION.
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HISOPADO NASOFARINGEO
Recomendaciones
- La muestre se toma con hisopo de Dacrón
montado en un alambre de aluminio o plástico,
estéril.
-Una vez tomada la muestra se conserva el
hisopo en un medio de transporte Amies/Cary
Blair/Stuart
-El tiempo de conservación es de 12 a 24 horas
- Se conserva a temperatura ambiente (No
refrigerar)
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OTITIS
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Membrana timpánica
Normal
Membrana timpánica
Hiperémica
(Inflamada/enrojecida)
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Membrana timpánica
Hiperémica
(Inflamada/enrojecida)
y llena de pus
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OTITIS
Posibles patógenos Gram positivos Staphylococcus aureus Streptococcus pyogenes Otros estreptocococ Beta-heoliticos Streptococcus pneumoniae Hongos Aspergillus sp. (Especialmente A. niger) Candida sp. Ocacionalmente algunos dermatofitos y Phycomycetos
Gram negativos Pseudomonas aeruginosas Haemophilus influenzae Klebsiella sp Proteus sp Escherichia coli y otros coliformes Bacteroides sp
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Microorganismos comensales En el oído medio normalmente no se encuentran microorganismo, ya que en condiciones normales es estéril, pero en el oído externo son: Gram positivos Streptococcus viridans Bacillus sp. Staphylococcus epidermidis Corynebacterias spp
Gram negativos Escherichia coli y otros coliformes
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EXUDADO OTICO
Recomendaciones
-La muestras tomadas con pipeta se
colocan en un tubo estéril.
- Las muestras tomadas con hisopo
se colocan en un medio de
transporte Amies/stuart/Cary Blair
- El tiempo de conservación es de
12 a 24 horas
- Se conserva a temperatura
ambiente (No refrigerar)
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EXUDADO OTICO
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EXUDADO OTICO
Recomendaciones
Normalmente no se toman muestras a
menos que:
1. Haya ruptura de membrana evidente
(Salida de pus y ocasionalmente
sangre)
2. Aun así es conveniente
a) Retirar con ayuda de un
hisopo, la pus externa con
sumo cuidado (Nunca introducir
profundamente el hisopo)
b) Tomar con un nuevo hisopo o
una pipeta de polietileno estéril
la pus del interior.
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MASTOIDITIS Infección del conducto mastoideo
genera dolor retroauricular
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MASTOIDITIS Infección del conducto mastoideo
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SINUSITIS
SENOS PARANASALES
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LA OBSTRUCCION
DE LOS SENOS
IMPLICA LA
ACUMULACION DE
MOCO Y PUS
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Gram negativos Haemophilus influenzae Neisseria meningitidis Bordetella pertussis Bordetella parapertussis Klebsiella sp
SINUSITIS
Posibles patógenos
Gram positivos
Streptococcus pneumoniae
Corynebacterium diphteriae*
Virus: Virus respiratorios y enterovirus
En algunos casos se puede encontrar M. leprae.
* C. diphteriae es mas frecuentemente aislado de exudado faríngeo.
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CONJUNTIVITIS
Posibles patógenos Gram positivos Staphylococcus aureus Streptococcus pneumoniae Streptococcus agalactie Streptococcus pyogenes Otros estreptococos beta-hemoliticos Virus Adenovirus, Virus de Herpes, Enterovirus
Gram negativos Neisseria gonorrhoeae Haemophilus influenzae Haemophilus aegyptius Pseudomonas aeruginosa Moraxella lacunata Enterobacterias Chlamydia trachomatis
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CONJUNTIVITIS
Infección en la conjuntiva ocular, la infección inicia con
sensación de arenillas en el ojo y lagrimeo, posteriormente
hay enrojecimiento, presencia de pus (Lagaña) e
inflamación de parpados
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Si la infección avanza se puede presentar la Queratoconjuntivitis la
cual compromete la visión
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Obstrucción del conducto
lagrimal
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CONJUNTIVITIS Recomendaciones
- La muestre se toma con hisopo
de Dacrón, estéril.
-Una vez tomada la muestra se
conserva el hisopo en un medio
de transporte Amies/Cary
Blair/Stuart
-El tiempo de conservación es
de 12 a 24 horas
- Se conserva a temperatura
ambiente (No refrigerar)
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-Una vez tomada la muestra se
conserva el hisopo en un medio
de transporte Amies/Cary
Blair/Stuart
-El tiempo de conservación es
de 12 a 24 horas
- Se conserva a temperatura
ambiente (No refrigerar)