TOMA DE MUESTRA DE SECRECIONES

TOMA DE MUESTRAS

Definición: Obtención de especimenes biológicos

para el apoyo al diagnóstico clínico.

Especimenes: * Líquidos * Secreciones * Otros materiales como tejidos.

QUIEN LA REALIZA?

1. Personal Profesional: * Médicos * Enfermeros * Microbiólogos * Personal Capacitado

2. Paciente Previa instrucción.

CONCEPTOS

Espécimen Material

extraído del paciente .

*Liquido *Secreción *Tejidos

Muestra

Parte del espécimen debidamente tratada que se emplea para el análisis.

* Sangre total * Plasma * Suero

Transporte y conservación de muestras para diagnóstico microbiológico

Muestra Determinación Envases

TRANSPORTE Tiempo y

temperatura

CONSERVACIÓN

Tiempo y temperatura

Abscesos/heridas

quemaduras/mordeduras

Bacterias

Envase para anaerobios (pref.) o jeringa sin aguja

(pref.). Una para Gram, otra para

cultivo (Amies/Stuart)

<2 h, TA <24 h, TA

  Hongos Estéril (pref.)/Torunda.

Una torunda para tinción, otra para cultivo (Amies/Stuart)

<2 h, TA <24 h, TA

  Virus Torunda seca¹Transferir a TV,

<24 h, 2- +24 h, -60/-

Catéter/material

protésico

Bacterias/Hongos Estéril <15 min, TA <24 h, 2-

Catéter urinario

No es aceptable      

Catéter drenaje

No se recomienda

Enviar líquido drenaje/ abscesos/aspirados    

Genital (Secreción

prostática) Bacterias/Hongos Estéril <2 h, TA <24 h, TA

Genital (cervical/ure

tral/rectal) Chlamydia trachomatis

Medio transporte clamidia (cultivo).

Torunda seca (fluorescencia) Inoculación inmediata  

Transporte y conservación de muestras para diagnóstico microbiológico

Muestra Determinación Envases

TRANSPORTE Tiempo y

temperatura

CONSERVACIÓN

Tiempo y temperatura

Muestra Determinación EnvasesTRANSPORTE

Tiempo y temperatura

CONSERVACIÓN

Tiempo y temperatura

Genital (cervical/rectal/uretr

al)

Bacterias (gonococo)

Inoculación directa sobre medios de cultivo

Torunda con medio transporte <2 h, TA <24 h, TA

Genital (líq. amniótico)

Bacterias/Hongos

Transporte de anaerobios <15 min, TA <24 h, TA

Genital (úlcera)

(cualquier localiz) Virus Torunda seca¹ Transferir a TV,

<24 h, 2- +24 h, -60/-

Genital (semen) No se recomienda      

Genital (úlcera) (cualquier

localización)

Treponema pallidum

Campo oscuro Inmediata visualización  

Genital (Uretral) Mycoplasma hominis Ureaplasma

urealyticum

Torunda de dacrón Inocular en medio transporte de

micoplasmas

<8 h, TA

<36 h, 2-

Genital (vaginal) Bacterias/Hongos

Torunda con medio transporte (cultivo)

Torunda seca para Gram

<2 h, TA <24 h, TA

SECRECION

Secreción (del latín secretio) proceso por el que una célula o un ser vivo vierte al exterior sustancias de cualquier clase.

También se llama secreción a la sustancia liberada.

El acto de verter una secreción se llama secretar.

Tipos de secreciones

Secreción exocrina: Si las sustancias son enviadas al exterior del cuerpo o de las mucosas.

Secreción endocrina: (S. interior o increción) , quedan dentro del cuerpo (por ejemplo, la sangre).

CULTIVO SECRECION

Se recomienda la toma de muestra sin antibioticoterapia por 3 días salvo indicación médica.

Para secreción faríngea requiere ayuno y sin aseo bucal.

Para la secreción vaginal no aplicación de ovulos ( min. 3 días ), no aseo de genitales. La muestra debe procesarse antes de las 2 horas de lo contrario colocar en medio de transporte (Amies o Stuart)

Días/inicio de proceso: Diario/continuo. Importante: Anotar en el rotulo de la muestra si el paciente está o no con antibioticoterapia.

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TOMA DE MUESTRAS EN LAS UNIDADES PRIMARIAS GENERADORAS DE DATOS

(UPGD)

Frotis faríngeo

Frotis Nasal

Frotis Nasofaríngeo

Lavado Nasofaríngeo/ Aspirado

Aspirado transtraqueal

Lavado broncoalveolar

Biopsia de pulmón

Tejido de traquea o pulmón post- morten

Tracto Respiratorio Superior

Tracto Respiratorio Inferior

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TOMA DE MUESTRAS EN LAS UNIDADES PRIMARIAS GENERADORAS DE DATOS

(UPGD)

HISOPADOS

MEDIDAS DE BIOSEGURIDAD

1 vial por paciente

2 viales por paciente

solicitud de análisis

1. Nombre completo y número de identificación del paciente.2. Localización del paciente (servicio, salón, piso, etc.).3. Descripción de la muestra, indicando el sitio de recolección

según corresponda.4. Fecha y hora de la recolección de la muestra.5. Diagnóstico -presuntivo o definitivo- del paciente.6. Indicación si el paciente está recibiendo o no tratamiento

con antimicrobianos.7. Otra información pertinente (si la muestra forma parte de

una serie de muestras, evaluación de tratamiento, etc.).8. Nombre completo, código y número de teléfono del médico

tratante.9. Firma del médico tratante.

Tipo de infección Muestra Comentarios

Bacteriemia Hemocultivos  Infecciones cardiovasculares y asociadas a dispositivos intravasculares (IV)

EndocarditisHemocultivos/Válvula/

Verrugas

Infección del catéterCatéter IV, piel

pericatéter, conexión del catéter

Pericarditis Líquido pericárdico

Sistema nervioso central

Meningitis LCR

Abscesos cerebrales Aspirados de abscesos

Tracto respiratorio

Faringoamigdalitis Exudado faríngeo

Sinusitis Aspirado sinusal No válidos los exudados nasales

Otitis media Timpanocentesis

Otitis externa Exudado oído externo

Neumonia

Esputo, muestras obtenidas por fibrobroncoscopia, punción transtorácica

aspirativa, punción transtraqueal,

broncoaspirado

Empiema y abscesos pulmonares

Líquido pleural, aspirados de abscesos

Nasofaríngeo Diagnóstico tosferina/Infecc. víricas

Nasal Detección de S. aureus

Tipo de infección Muestra Comentarios

Infecciones oculares

ConjuntivitisExudado

conjuntival/raspado

Queratitis Raspado corneal

Endoftalmitis Líquido intraocular

Infecciones gastrointestinales

Diarrea Heces/Biopsia intestinal/ Aspirado duodenal

Infecciones intraabdominales

Peritonitis Líquido peritoneal

Abscesos intraperitoneales y abscesos viscerales

Aspirados de abscesos

Colecistitis Líquido biliar

Tipo de infección Muestra Comentarios

Tracto urinario

Infección urinariaOrina (micción media,

sonda) Orina obtenida mediante

punción suprapúbica

Diagnóstico de bacteriuria por anaerobios y de ITU en

niños

Tracto genital

Úlceras genitales Raspado de la úlcera

Nódulos genitales Aspirado del nódulo

Uretritis Exudado uretral

Vulvovaginitis Exudado vaginalDetección de S.agalactiae (también exudado rectal )

Cervicitis Exudado endocervical

Prostatitis Secreción prostáticaAcompañada de orina pre y

post masaje prostático

Tipo de infección Muestra Comentarios

Piel y tejidos blandos

Impétigo, foliculitis, erisipela, celulitis, úlceras, infecciones gangrenosas,

abscesos cutáneos, heridas y quemaduras

Preferiblemente aspirados tomados con

jeringa y biopsias de tejido. Son menos recomendables las

muestras tomadas con torundas

Hueso y articulaciones

Artritis Líquido sinovial

Osteomielitis Biopsia ósea o exudado

Tipo de infección Muestra Comentarios

Cultivo Faringeo

1. El día de la toma de muestra presentarse en ayunas al laboratorio.

2. No utilice enjuague bucal el día de la toma de la muestra.

Material Características

Algodón

Los ácidos grasos residuales presentes en algunos tipos de algodón pueden inhibir algunas bacterias, particularmente Chlamydia

DacronAdecuado para la recuperación de Streptococcus pyogenes

Alginato de calcio

Adecuado para la recuperación de Chlamydia, pero puede ser tóxico para algunas cepas de Neisseria gonorrhoeae, Ureaplasma urealiticum.

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1. Pida al paciente que abra la boca y saque la lengua, repitiendo reiteradamente la letra “a” con el fin de exponer mejor la faringe.

2. Con la ayuda de un baja-lenguas, presione la lengua. La manipulación en este momento de la toma de muestra es de gran importancia para evitar la lengua y la contaminación que de ella se derive.

3. Tome el hisopo, colóquelo en la parte posterior y superior de la faringe, lo más cercano a la nasofaringe.

4. Luego rote el hisopo por la parte posterior de las amígdalas, mediante movimiento enérgico rotatorio y a la vez de arriba hacia abajo, con el fin de lograr obtener el mayor número de células.

5. Coloque el hisopo con la muestra en el vial medio de transporte viral y marque el recipiente (nombre, apellidos, fecha).

FROTIS FARÍNGEO

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1. Insertar el escobillón en la ventana nasal paralela al paladar. Deslizar por la mucosa del piso de la fosa nasal hasta tocar la pared posterior de la faringe, asegurándose que se encuentra en el área de la nasofaringe.

2. Frotar la zona de la nasofaringe haciendo girar el escobillón para obtener una buena cantidad de células epiteliales.

3. Retirar lentamente el escobillón con movimiento giratorio para absorber las secreciones.

4. Repetir el procedimiento en la otra ventana nasal utilizando otro hisopo.

5. Colocar los escobillones en el vial que contiene el medio de transporte viral, corte el resto del escobillón y tape el vial.

6. Marcar el recipiente de la muestra en el vial medio de transporte viral y marque el recipiente (nombre, apellidos, fecha).

FROTIS NASOFARÍNGEO

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1. Insertar un escobillón en la ventana nasal, paralelo al paladar, y deslizar por el piso de la mucosa permaneciendo en el lugar por unos segundos.

2. Rotar el escobillón lentamente

3.Colocar el escobillón en el vial que contiene el medio de transporte viral, cortar el resto del escobillón y tapar el vial.

4.Marcar el recipiente de la muestra en el vial medio de transporte viral y marque el recipiente (nombre, apellidos, fecha).

FROTIS NASAL

Tomado del manual: Ministerio de la Protección Social,Instituto Nacional de Salud,Subdirección Red Nacional de Laboratorios

(RNL)Vigilancia por Laboratorio de Influenza y otrosVirus

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1. Introduzca 1 ml de solución salina estéril (pH: 7.0) en una de las ventanas nasales utilizando una jeringa unida a una pieza pequeña de tubo plástico (sonda).

2. Aspire todo el material de la secreción nasofaríngea que sea posible. Si la muestra se ve con moco o turbia se considera adecuada. Si no lo es repita el procedimiento con la otra ventana nasal.

3. Agregue la muestra al vial estéril

4. Enjuague la jeringa en el vial estéril utilizando para ello el medio de transporte viral.

5. Coloque la muestra en el vial medio de transporte viraly marque el recipiente

LAVADO NASOFARÍNGEO (ASPIRADO)

Paciente hospitalizado

http://www.facmed.unam.mx/deptos/salud/periodico/rsv/img/cuatro.jpg

1-Secreción conjuntival

Se recomienda la toma de ambos ojos Material utilizado Hisopos secos :cuando hay secreción. Hisopos húmedos en caldo –tripticase-soya o BHI: cuando no hay

secreción. Cantidad de hisopos 4(cuatro) :2(dos) por cada ojo, uno para cultivo y

otro para coloración. Medio de trasporte: Se sugiere la siembra directa sin medio, en caso de

no poder efectuarse, utilizar Cary –Blair , no Stuart. Técnica Pasar el hisopo sobre la conjuntiva inferior,2 ó 3 veces en la misma

dirección (y no hacia delante y atrás),desde el ángulo interno, evitando tocar el mismo, hacia el otro extremo absorbiendo el material sin frotar. No tocar el borde del párpado.

NOTA: En todos los casos la muestra en el medio de trasporte, deberá remitirse

acompañada de los 2(dos) frotis preparados en el momento de la toma de muestra.

2-Secreción del borde de párpado

Diagnóstico presuntivo: Blefaritis Técnica del raspado: Tirar el párpado hacia el costado y

manteniendo tirante ,raspar desde la raíz de las pestañas a lo largo del borde del párpado (en la blefaritis ulcerosa remover primero las crostras). Sembrar directamente.

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MEDIO DE TRANSPORTE VIRAL

INCORRECTO CORRECTO

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Conservación de muestras

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Si la muestra es de aspirado nasofaríngeo, aspirado bronquial olavado broncoalveolar los cuales se obtienen con solución salina estéril en ausencia del medio de transporte viral bajo losparámetros del INS, deben refrigerarse inmediatamente ytransportarse al LSP a la mayor brevedad (antes de 24 h).

UNA VEZ TOMADA LA MUESTRA

Tomado del manual: Ministerio de la Protección Social,Instituto Nacional de Salud,Subdirección Red Nacional de Laboratorios (RNL)Vigilancia por Laboratorio de Influenza y otrosVirus

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• Conservar la cadena de frío.

TRANSPORTE DE MUESTRAS AL LABORATORIO

Características y componentes del embalaje

Los embalajes deben ser:

- De buena calidad, lo suficientemente fuerte para soportar los golpes y cargas que normalmente se presentan durante el transporte.

- Cerrados para prevenir cualquier pérdida de contenido causado bajo las condiciones normales del transporte, por la vibración, o por los cambios en la temperatura, la humedad o la presión

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TRANSPORTE DE MUESTRAS AL LABORATORIO

Recipiente principal o primario hermético

Embalaje secundario contenedor secundario hermético

Embalaje exterior o terciario

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TRANSPORTE DE MUESTRAS AL LABORATORIO DE SALUD PÚBLICA

LABORATORIO

TRANSPORTE DE MUESTRAS AL LABORATORIO

Secreción Vaginal

MUESTRAS GENITALES

Como se trata de muestras que provienen de sitios que tienen gran cantidad y variedad de flora comensal, la selección de la misma y el método de recolección es crítico.

Muchos agentes de infección genital en las mujeres, están limitados a sitios específicos, por ejemplo:

Condiciones generales para la toma de muestra de secreción vaginal

NO debe aplicarse óvulos ni medicamentos intravaginales 8 días antes de la toma de la muestra.

NO debe hacerse baño con ducha vaginal el día de la toma de la muestra.

NO tenga relaciones sexuales 3 días antes de la toma de la muestra.

NO realizar la toma de la muestra durante el período menstrual. Espere 8 días.

Si usted desea repetirse una Citología para verificar tratamiento se debe esperar 3 meses entre cada muestra.

MUESTRAS GENITALES

Vulva: Trepomema pallidum, Haemophilus ducreyi, Herpesvirus, Levaduras.

Vagina: Trichomonas vaginalis, Candida albicans, Bacterias de vaginosis bacteriana.

Cervix: Neisseria gonorrhoeae, Chamydia sp., Herpesvirus, Actinomyces spp.

Uretra: Neisseria gonorrhoeae, Chlamydia spp

Bacterias aerobias y anaerobias: La investigación de anaerobios esta limitada a ciertos especímenes, por ejemplo:

Mujeres: No Aptos Aptos Endocervix Placenta ( por cesárea ) Vagina Utero Uretra Trompa de Falopio Placenta Aspirado cervical Vulva Ovario Loquios Glándula de Bartholino Perineo

Hombres: Uretra Liquido prostático

Consideraciones generales para la toma de Secreción Vaginal

1. Evitar el uso de óvulos, medicamentos intravaginales 8 días antes de la toma de la muestra.

2. No aplicar duchas vaginales días previos a la toma de muestra.

3. Abstinencia sexual por 3 días antes de la toma de la muestra.

4. No realizar la toma de la muestra durante el período menstrual, se recomienda esperar 8 días.

PROCEDIMIENTO:

Generalidades:

En todos los casos:a) lavado de manos.b) colocación de guantes

Secreción vaginal

Retirar las secreciones de la membrana mucosa con un Hisopo o pipeta.

Con otro: realizar extendido para coloración de Gram.

Colocar en medio de transporte semisólido.

Remitir al Laboratorio o conservar a Temperatura Ambiente.

Secreción vaginal

Para investigación de Ureaplasma urealyticum y Mycoplasma hominis: tomar la muestra con hisopo, colocarlo en un tubo sin medio de transporte. Remitir INMEDIATAMENTE al Laboratorio.

Consultar con los profesionales del sector por variantes, relacionadas con la metodología de diagnóstico en uso.

Muestra cervical/endocervical:

• Colocar el espéculo. NO usar lubricante.• Remover moco o secreciones.• Comprimir el cuello con los bordes del espéculo y

recolectar la descarga o insertar el hisopo en el cuello, rotarlo 30" para obtener el material.

• Repetir la operación para: extendidos, cultivos especiales.

• Colocarlos en los medios de transporte adecuados.

• Remitir al Lab. o conservar a Temperatura Ambiente.

• NO refrigerar.

Toma de muestra

Muestras uretrales:

De elección para el estudio de las E.T.S. en el hombre.

• Retención urinaria de 6 hs.• Remover la flora externa, retrayendo el prepucio y

lavando la zona con agua hervida enfriada y jabón.• Recoger el exudado de la uretra con hisopo y

colocarlo en medio de transporte adecuado.• Con otro hisopo, recolectar más exudado para

realizar un extendido haciéndolo rodar 2 o 3 veces sobre un portaobjeto.

• Si no hubiera secreción, insertar un hisopo 2-3 cm. en la uretra y repetir la operación.

• Remitirlo INMEDIATAMENTE al Laboratorio.

FUERA DEL HORARIO DE RECEPCIÓN: Dejarlo a Temperatura ambiente

NUNCA REFRIGERAR.

d) Endometrio: Las muestra deben ser extraídas

evitando contaminación vaginal y cervical, con hisopo transcatéter.

e) Investigación de Chlamydia:

Generalidades Como se trata de parásitos obligados

intracelulares de células del epitelio cúbico, debe obtenerse material útil.

NUNCA enviar secreciones vaginales. ANTES de tomar la muestra, retirar el

moco o las secreciones si las hubiera y luego proceder a tomar la muestra con las indicaciones especificas del equipo de diagnóstico en uso en cada Laboratorio.

f) Enfermedad pélvica inflamatoria:

Las muestras se obtienen por métodos invasivos (de ovarios de Trompas de Falopio, etc.)

g) Dispositivos Intrauterinos: Cuando son retirados y se sospecha

infección, transportarlo al Laboratorio en un frasco estéril en forma INMEDIATA.

h) Colonización por Streptococcus grupo B:• Utilizar 1 o 2 hisopos (vaginal o anorecto).• NO usar espéculo.• Remitir al Laboratorio INMEDIATAMENTE

con medio de transporte semisólido.

i) Lesiones Genitales:

1) Ulceras2) Vesículas• Limpiarla con solución fisiológica y remover

la superficie con una lanceta estéril.• Dejar que se acumule el transudado.• Presionar la base de la lesión y tomar la

muestra obtenida con hisopo.• Enviar al Laboratorio INMEDIATAMENTE.FUERA DEL HORARIO DE RECEPCIÓN: Consultar por el medio de transporte

adecuado.

Recolección de Esputo 1. La limpieza bucal debe hacerse

únicamente con agua, evite el uso de enjuagues bucales.

2. La muestra debe ser recogida en ayunas.

3. La muestra debe ser obtenida por expectoración, evitando contaminarla con saliva o secreción nasofaríngea.